eISSN: 1897-4309
ISSN: 1428-2526
Contemporary Oncology/Współczesna Onkologia
Current issue Archive Manuscripts accepted About the journal Supplements Addendum Special Issues Editorial board Reviewers Abstracting and indexing Subscription Contact Instructions for authors Publication charge Ethical standards and procedures
Editorial System
Submit your Manuscript
SCImago Journal & Country Rank
9/2006
vol. 10
 
Share:
Share:

Skin melanoma: present possibilities of treatment in Poland based on own experiences of melanoma patients’ course and current review of literature

Witold Kycler
,
Marek Teresiak

Współcz Onkol (2006) vol. 10; 9 (437–448)
Online publish date: 2006/11/29
Article file
- czerniak skory.pdf  [0.19 MB]
Get citation
 
 

Wstęp
Czerniak należy do nowotworów o systematycznie wzrastającym współczynniku zachorowalności. Chociaż stanowi jedynie 4% złośliwych nowotworów skóry, odpowiedzialny jest za 79% zgonów wywołanych tymi nowotworami [1]. W wielu krajach stanowi poważny problem dla zdrowia publicznego. W ostatnich latach dowiedzieliśmy się dużo o biologii tego szczególnie trudno przewidywalnego nowotworu, jednak nadal wiedza i możliwości techniczne w praktycznej walce z czerniakiem zawodzą. Wczesne wykrycie i profilaktyka są więc ważnymi elementami w walce z tym nowotworem. Diagnostyka znamion barwnikowych i czerniaka stwarza zawsze trudności i wymaga doświadczenia. Podstawą rozpoznania jest badanie skóry, badanie dermatoskopowe i histopatologiczne. Na świecie przeprowadzane są od wielu lat badania przesiewowe, umożliwiające wczesne wykrycie czerniaka i kwalifikujące do leczenia prewencyjnego w przypadku znamion atypowych. Dzięki temu wyniki leczenia czerniaka i nowotworów skóry w tych krajach są znacznie lepsze. W USA na 100 przypadków czerniaka 20% kończy się zgonem, natomiast w Polsce – 55%. Programy badań przesiewowych, ze względu na ich bardzo wysokie koszty nawet w bardzo bogatych krajach nie zawsze są realizowane. W walce z czerniakiem pomagają media i programy edukacyjne kształtujące świadomość zdrowotną. Autorzy przedstawiają przegląd aktualnej wiedzy na temat czerniaka i możliwości zastosowania jej w praktycznej walce z jednym z najbardziej złośliwych nowotworów człowieka.
Epidemiologia
Współczynnik zachorowań na 100 tys. mieszkańców wynosi średnio na świecie od 4 do 12 [1]. Najwyższy współczynnik stwierdzono w Australii – od 40 do 60 zachorowań rocznie, natomiast w Stanach Zjednoczonych 10–20 zachorowań na 100 tys. mieszkańców. W krajach europejskich najwięcej zachorowań notuje się w Skandynawii, ze współczynnikiem zachorowań na poziomie 15 przypadków rocznie na 100 tys. mieszkańców, a najmniej w krajach śródziemnomorskich z ok. 5–7 zachorowaniami na 100 tys. mieszkańców [2]. Polska należy do krajów o niskim wskaźniku zachorowalności, ale z systematycznym wzrostem, wynoszącym 2,6% rocznie dla mężczyzn i 4,4% dla kobiet [3, 4]. Zachorowalność na czerniaka skóry w regionie Wielkopolski w 1995 r. wynosiła 3,3/100 tys. u mężczyzn i 3,1/100 tys. u kobiet [3], natomiast w 2002 r. 4,4/100 tys. u mężczyzn i 5,1/100 tys. u kobiet [5]. Diagnostyka Diagnostyka czerniaka skóry polega na klinicznej ocenie wyglądu zmian skórnych na podstawie charakterystycznych objawów sklasyfikowanych w dwóch systemach: ABCD i 7-punktowej skali Glasgow. Część zmian, przy braku jednoznacznego rozpoznania klinicznego, kwalifikuje się do biopsji wycinającej z zachowaniem odpowiedniego marginesu zdrowej skóry, poszerzonego również o odpowiedni fragment podskórnej tkanki tłuszczowej dla przeprowadzenia dokładnej oceny histopatologicznej [6]. Ustalenie dokładnego stopnia zaawansowania klinicznego wymaga oprócz badania klinicznego i histopatologicznego zastosowania uzupełniających technik obrazowych. Obok klasycznych technik, takich jak zdjęcia radiologiczne, ultrasonografia, badania tomograficzne, stosuje się USG z wykorzystaniem głowic o wysokiej częstotliwości 20 MHz, identyfikujących czerniaka jako lity hipoechogenny naciek z wyraźnie odgraniczonym marginesem umożliwiający pomiar grubości guza [7], badania z wykorzystaniem jądrowego rezonansu magnetycznego (NMR) [8] oraz bardzo dokładne badania techniką pozytronowej emisyjnej tomografii (PET) [9]. Niestety, część z tych badań ze względu na wysokie koszty nie ma zastosowania w codziennej praktyce klinicznej. Na podstawie uzyskanych informacji klinicznych i wyniku badania histopatologicznego ustala się stopnie zaawansowania klinicznego czerniaka. Klasyfikacja TNM oraz stopnie zaawansowania klinicznego czerniaka przedstawione zostały w tab. 1. i 2. Zmiany w sposobie leczenia i udział specjalistów różnych dziedzin medycyny w leczeniu wymagały dokonania korekty istniejącego systemu stopniowania klinicznego i określenia zasadniczych czynników prognostycznych. Zmiany wprowadził w 2002 r. Komitet Klasyfikacji Czerniaka (Melanoma Staging Committee) Amerykańskiego Towarzystwa do Walki z Rakiem (American Joint Committee on Cancer AJCC) w porozumieniu z Komitetem TNM Międzynarodowej Unii Przeciwrakowej (International Union Against Cancer UICC) [10, 11]. Klasyfikacja została opracowana w porozumieniu z czołowymi ośrodkami zajmującymi się czerniakiem i opublikowana w 6. wydaniu Podręcznika klasyfikacji nowotworów (Cancer Staging Manual) z roku 2002.
Profilaktyka
Dotarcie do grupy osób szczególnie narażonych na zachorowanie i opracowanie ukierunkowanych i skutecznych metod profilaktyki ma podstawowe znaczenie w zapobieganiu zachorowaniom. Do czynników wysokiego ryzyka należą: intensywna ekspozycja na promienie słoneczne, zespół znamion dysplastycznych, pewne cechy fenotypowe (niebieski lub zielony kolor oczu, jasne, rude włosy, jasna karnacja, piegi, nadwrażliwość na światło słoneczne i skłonność do oparzeń słonecznych), zachorowania na czerniaka u krewnych, nowotwór złośliwy skóry inny niż czerniak, stany przedrakowe skóry w wywiadzie, większa liczba znamion barwnikowych. Należy przy tym pamiętać, że brak ww. czynników nie wyklucza ryzyka zachorowania. Natomiast osoby, u których występuje jeden lub dwa takie czynniki charakteryzują się 3,5 razy większą zapadalnością na czerniaka, a w przypadku trzech lub więcej nawet 20-krotnie [12]. Kosmetyki z filtrami anty-UV chroniące przed słońcem powinny być stosowane kilka razy dziennie. Ich działanie osłabiane jest przez pot, nie wszystkie są wodoodporne i łatwo mogą zostać wytarte. Kremy nie zabezpieczają przed całym zakresem promieniowania słonecznego. Na Ziemię dociera przede wszystkim promieniowanie UVA, które nie wywołując widocznych zmian na skórze w postaci oparzenia może przyczynić się do rozwoju czerniaka. Wyeliminowanie zakresu promieniowania, który odpowiedzialny jest za oparzenie skóry (promienie UVB) powoduje, że uzyskujemy fałszywą protekcję. Preparaty anty-UV starszej generacji mając taki zakres ochrony mogły zwiększać ryzyko zachorowania na czerniaka. W przeprowadzonych metaanalizach badań retrospektywnych udowodniono jednak, że stosowanie kremów z filtrami anty-UV nie zwiększyło ryzyka zachorowania na czerniaka [13]. Wiele z tych badań retrospektywnych potwierdziło przydatność kremów z filtrem UV w zapobieganiu rozwoju czerniaka [14, 15]. Potrzeba wielu lat badań prospektywnych do potwierdzenia skuteczności aktualnych formuł preparatów anty UV-A i UV-B. W obowiązujących zaleceniach towarzystw dermatologicznych (m.in. American Academy of Dermatology oraz American Cancer Society) uważa się, że pomimo braku jednoznacznych dowodów na skuteczność takiej ochrony, stosowanie takich preparatów stanowi uzupełnienie fizycznej ochrony przed szkodliwym promieniowaniem UV [16]. Na podstawie przeprowadzonych programów prewencyjnych i badań przesiewowych stwierdzono, że gdyby każdy został przebadany raz w roku pod kątem czerniaka, to zgony z jego powodu należałyby do rzadkości. Niestety, na podstawie doświadczeń badań przeprowadzonych w USA relacja kosztów do uzyskanych wyników uniemożliwia ich powszechne stosowanie [17]. Podczas przeprowadzonej przy współpracy Urzędu Miasta Poznania i Wielkopolskiego Centrum Onkologii w Poznaniu w 2002 r. akcji prewencyjnej badania skóry i zapobiegania czerniakowi, stwierdziliśmy duże zainteresowanie taką formą profilaktyki. Na badanie mogli zgłosić się mieszkańcy Poznania w wieku powyżej 18 lat. W grupie 524 pacjentów skierowanych na zabiegi ambulatoryjne stwierdzono w prawie 70% przypadków łagodne zmiany barwnikowe, w 24% przypadków łagodne niemelanocytarne zmiany skórne najczęściej o charakterze rogowacenia, w 7,6% raki skóry. Czerniaka wykryto u 1,5% operowanych pacjentów. Raki skóry wykryte w ramach programu badań przesiewowych to 34 raki podstawnokomórkowe i 6 raków płaskonabłonkowych. Były to wczesne, mało zaawansowane przypadki skierowane do leczenia chirurgicznego. Na 1000 przebadanych osób wykryto 4 przypadki czerniaka, co w porównaniu ze średnim występowaniem czerniaka 4/100 tys. w Polsce daje 100 razy większą wartość w przebadanej grupie. Szczegółowe wyniki programu badań przesiewowych zostaną przedstawione w publikacji.
Wykrywanie wczesnych postaci czerniaka
Zasadniczym elementem wykrycia wczesnej postaci czerniaka jest niewymagające specjalnego wyposażenia pełne przedmiotowe badanie skóry. Pozwala w większości przypadków na trafne wybranie do weryfikacji histopatologicznej podejrzanych zmian. Pacjentów skierowanych do obserwacji informuje się i szkoli w umiejętności rutynowego samobadania skóry [18]. Podstawowym instrumentarium pozwalającym na dokładniejszą ocenę zmiany barwnikowej in situ jest dermatoskopia z zastosowaniem olejku imersyjnego. Technika mikroskopii epiluminescencyjnej umożliwia ocenę morfologiczną szeregu cech mogących ułatwić rozpoznanie in vivo. W ocenie kieruje się zasadami sklasyfikowanymi w dwóch systemach: ABCD i 7-punktowej skali Glasgow. Bardziej popularną w USA i stosowaną w Polsce jest skala ABCD. Wymienione wyżej skale przedstawiono na ryc. 1. i 2. [19]. W ostatnich latach pojawiły się nowe typy dermatoskopów połączonych z aparatami cyfrowymi, pozwalające na ocenę zmian skórnych dzięki odpowiedniemu oprogramowaniu, co zmniejsza fałszywie ujemną ocenę kliniczną i pozwala na wykonywanie badań kontrolnych. Badanie to powinno być jednak wykonywane przez osoby z dużym doświadczeniem w ocenie zmian skórnych. Przeprowadzone przez Evansa i wsp. badania wykazały, że lekarze niebędący specjalistami chorób skóry 3 razy częściej niż dermatolodzy nie rozpoznawali czerniaka [12].
Leczenie chirurgiczne
Operacyjne wycięcie jest podstawową metodą leczenia czerniaka. Zakres zabiegu chirurgicznego zależy od stopnia miejscowego zaawansowania zmiany, lokalizacji zmiany i stanu klinicznego węzłów chłonnych. Ocena marginesów wycięcia ogniska pierwotnego czerniaka w ostatnich latach udowodniła brak konieczności stosowania wycięć z marginesem 5 cm. Wiadomo jednak, że grubość naciekania skóry wg Breslowa jest znaczącym czynnikiem ryzyka wznowy miejscowej [20]. Zalecane boczne marginesy wycięcia oraz schemat leczenia czerniaka w zależności od głębokości nacieku przedstawiono w tab. 3. [21, 22]. Tkanki wycina się do powięzi. Nie wykazano dodatkowych korzyści z poszerzania wycięcia o głębsze warstwy. Rola chirurgii węzłów chłonnych w czerniaku znacznie zmieniła się w ostatnich latach – od wykonywanych elektywnie limfadenektomii w przypadku niezmienionych makroskopowo węzłów chłonnych z selektywną limfadenektomią w zmienionych przerzutowo węzłach, do nowoczesnych sposobów identyfikacji chorych z utajnionymi przerzutami do węzłów chłonnych. Oceniliśmy retrospektywnie wyniki leczenia 124 pacjentów leczonych z powodu czerniaka w latach 1990–1994 na II Oddziale Chirurgii Onkologicznej (tab. 4.) w zależności od wykonanej limfadenektomii zarówno selektywnej, jak i elektywnej. W ocenianej grupie chorych potwierdzono wpływ stanu węzłów chłonnych na czas przeżycia [23]. Wykonana limfadenektomia nie zmieniała czasu przeżycia w porównaniu z grupą z jedynie miejscowym wycięciem czerniaka. W badanej grupie jednoczesne wycięcie węzłów chłonnych wraz z wycięciem guza nie miało statystycznie znamiennego wpływu na medianę przeżycia oraz rozkład kumulacji przeżycia. Potwierdza to opinię wielu autorów niezalecających wykonywania równoczesnej elektywnej limfadenektomii [24–27]. Silna korelacja obecności przerzutów w węzłach chłonnych z czasem przeżycia świadczy o konieczności weryfikacji węzłów. Biopsja węzła wartowniczego wprowadzona w ostatnich latach jako standard w leczeniu czerniaka pozwala na oszczędzenie węzłów chłonnych u pacjentów bez przerzutów, zmniejszając narażenie chorego na niepotrzebne powikłania pooperacyjne przy zachowaniu takich samych wyników leczenia [23, 26, 28–34]. Uzyskiwane przez nas wyniki chirurgicznego leczenia czerniaka wyraźnie odbiegają od uzyskiwanych w krajach lepiej rozwiniętych. Z analizy przeżycia 202 pacjentów leczonych w Wielkopolskim Centrum Onkologii w latach 1990–1995 (tab. 5., ryc. 3.) wynika, że 25% pacjentów zmarło w ciągu 26 mies., a 50% przeżyło dłużej niż 87,4 mies. Tylko ponad połowa (56%) pacjentów przeżyła 5 lat od operacji w porównaniu z 80–90% przeżywalnością w USA i Australii. Największy wzrost liczby zgonów z powodu czerniaka w leczonej u nas grupie nastąpił pomiędzy 16. a 32. mies. po operacji. Kolejne obniżanie prawdopodobieństwa przeżycia następowało do przedziału 65,5 mies. i po okresowym wzroście w przedziale 81,8 mies. osiągnęło najmniejszą wartość w przedziale 98,2 mies. Z uzyskanych informacji o gęstości prawdopodobieństwa przeżycia w odpowiednich przedziałach czasu liczonych od operacji stwierdziliśmy, że okres 5 lat (60 mies.) określany w wielu nowotworach złośliwych jako wskaźnik uzyskania korzystnego efektu leczenia jest za krótkim okresem do postawienia takich wniosków w przypadku czerniaka. Na podstawie analizy czasu przeżycia w badanej grupie dopiero obserwacja, co najmniej 98-miesięczna (ok. 8 lat) pozwala przewidywać, że pacjent znalazł się w grupie z korzystnym rokowaniem i zwiększającym się z każdym miesiącem prawdopodobieństwem przeżycia bez nawrotu czerniaka.
Rola oceny węzła wartowniczego
Od kilku lat ośrodki onkologiczne na całym świecie i większość oddziałów chirurgii onkologicznej w Polsce wprowadziły metodę leczenia czerniaka z wykorzystaniem znakowania węzła wartowniczego (sentinel node – SN). Celem wprowadzenia tej metody było zastąpienie poprzednio powszechnie stosowanego profilaktycznego wycięcia węzłów chłonnych (Elective Lymph Node Dissection – ELND) zabiegiem mniej inwazyjnym, pozwalającym na zachowanie węzłów chłonnych u blisko 80% pacjentów. Metoda SN cechuje się minimalną inwazyjnością, jest ukierunkowana na specyficzny węzeł chłonny, tzw. węzeł wartowniczy, czyli pierwszy w zakresie spływu chłonnego z obszaru skóry objętego procesem nowotworowym. Pozwala na oszczędzenie niezmienionych węzłów chłonnych u pacjentów bez przerzutów, zmniejszając narażenie chorego na niepotrzebne powikłania pooperacyjne przy zachowaniu takich samych wyników leczenia [26, 28–34]. Aktualnie metoda SN uważana jest za standardowe podejście do klasyfikowania stadium pierwotnego ogniska czerniaka złośliwego, czyli określania tego, czy u pacjenta pojawiła się choroba na poziomie mikroskopowym w regionalnych węzłach chłonnych, czy nie [35]. Dzięki wykorzystaniu nowoczesnych technik poszukiwania węzła wartowniczego wykorzystujących detektory promieniowania gamma, odsetek wyników fałszywie negatywnych jest niezmiernie niski przy uzyskaniu bardzo dużych korzyści terapeutycznych. Zgodnie ze standardami leczenia czerniaka w liczących się ośrodkach onkologicznych w Polsce oraz w Europie zabieg ten odbywa się z wykorzystaniem potrójnej metody lokalizacji, na którą składa się: limfoscyntygrafia spływu chłonnego z okolicy ogniska pierwotnego, lokalizacja węzła z wykorzystaniem znacznika izotopowego wykrywanego gamma kamerą i barwnika (błękitu metylenowego). SN badany jest na podstawie skrawków uzyskanych z wielokrotnych przekrojów barwionych za pomocą hematoksyliny i eozyny oraz metodami immunohistochemicznymi przy użyciu przeciwciał przeciwko markerom związanym z czerniakiem (S-100, HMB-45, MelanA/Mart-1) [36]. Stosowano również analizę skrawków mrożonych z badaniem śródoperacyjnym. Obecnie rezygnuje się z tej metody ze względu na utratę tkanki w trakcie obróbki oraz jej zniekształcenie podczas rozmrażania i przygotowywania bloków parafinowych. Utracie ulegał także zwykle obszar podtorebkowy węzła, czyli ta część, która najczęściej zawiera komórki przerzutowe [37, 38]. W literaturze podkreśla się rolę przygotowania i techniki wykonywania seryjnych skrawków z SN. Przeprowadzone badania nie wykazały jednak różnic w uzyskiwanych wynikach w zależności od liczby skrawków z węzła chłonnego [39–41]. Zaleca się rutynowe wykonywanie we wszystkich węzłach wartowniczych badań immunohistochemicznych. Jednak Cochran i wsp. [39] zalecają barwienia immunohistochemiczne tylko, jeżeli podczas badania mikroskopowego nie stwierdza się widocznych przerzutów. Liczba przerzutów wykrytych na podstawie badania preparatów barwionych tylko metodą HE jest coraz wyższa. Zaledwie 12% węzłów, w których są przerzuty można diagnozować jedynie metodami immunohistochemicznymi [42]. Bardzo duże zainteresowanie wzbudza biologia samego węzła chłonnego określanego jako wartowniczy. Poszukuje się charakterystycznych cech pozwalających na odróżnienie go od pozostałych węzłów chłonnych. Jednocześnie podkreśla się rosnącą rolę patologa w jego ocenie. W jednym z badań podaje się do mieszanki barwnika i izotopu widocznych pod mikroskopem cząsteczek, np. węgla, służących do potwierdzenia identyfikacji SN przez patologa. Głównym problemem w ocenie barwionych HE węzłów wartowniczych jest obecność makrofagów zawierających lub nie melaninę, przypominających komórki czerniaka. Techniki immunohistochemiczne pozwalają na odróżnienie tych komórek. Badanie immunohistochemiczne na obecność białka S-100 jest bardzo czułe, ale nieswoiste. Wykrywa komórki dendrytyczne, torebkowe, beleczkowe, komórki znamion i Schwanna osłonek nerwowych. Komórki dendrytyczne rozpoznawane są na podstawie ich charakterystycznych cech, takich jak występowanie w peryferyjnych przykorowych częściach węzła, obecności nerkowatych jąder komórkowych i polidendrytycznej budowy morfologicznej. W SN ze względu na stan immunosupresji zmieniają się w komórki bezdendrytyczne, trudne do odróżnienia od newoidalnych komórek czerniaka [43–45]. Pozostałe standardowe markery immunohistochemiczne są bardziej swoiste niż S-100, ale nie ulegają ekspresji w 20% komórek czerniaka. W zakończonych badaniach prospektywnych stwierdzono, że obecność komórek czerniaka w SN jest istotnym czynnikiem prognostycznym [46]. Pojawiły się jednak wątpliwości związane z nieobecnością w 87% przerzutów w dalszych usuwanych węzłach chłonnych innych niż SN. Nie potwierdzono korzyści z wykonywanej w tych przypadkach limfadenektomii. W pozostałych zwykle stwierdza się przerzut do jednego węzła innego niż SN z niewielką objętością przerzutu. Prowadzi się badania nad czynnikami prognostycznymi związanymi z SN, takimi jak objętość, wielkość, głębokość inwazji, lokalizacja przerzutu w węźle, ocena immunosupresji na podstawie wyglądu komórek dendrytycznych. W programie badań nad czerniakiem pod egidą WHO (WHO Melanoma Program) prowadzone są prace nad prognostyczną wartością pomiarów wszystkich mikro- i makroognisk przerzutów czerniaka [47]. Prawdopodobnie w najbliższych latach mikrostopniowanie SN wejdzie do rutynowego postępowania. Shivers i wsp. [48] w swoich badaniach nad molekularną klasyfikacją czerniaka ustalili 4 kategorie ryzyka na podstawie badania SN: 1) stwierdzenie przerzutów w badaniu HE, 2) w badaniach immunohistochemicznych bez potwierdzenia w barwieniu HE, 3) jedynie w badaniu przeprowadzonym przy pomocy reakcji łańcuchowej polimerazy, 4) węzły niewykazujące obecności komórek czerniaka w żadnym badaniu. Sytuacja stwierdzenia przerzutu w barwieniu HE lub jego braku jest klinicznie jednoznaczna i pacjenta poddaje się odpowiednio limfadenektomii lub kieruje do ścisłej kontroli. Problem stanowią pacjenci z przerzutem stwierdzonym jedynie na podstawie badań immunohistochemicznych lub PCR. W tych przypadkach nie wiadomo czy wykrycie mikrośladów czerniaka w węźle wartowniczym jest już przerzutem, czy może depozytem komórkowym lub naturalną reakcją obronną związaną np. z prezentacją antygenu. Postępowanie z takimi przypadkami nie zostało jeszcze ustalone. Od początku wprowadzenia metody SN krytykowano potencjalną możliwość wzrostu liczby przerzutów in transit. Wykazano jednak, że chirurgia regionalnego układu chłonnego związana z SN nie zwiększa takiego ryzyka [49, 50]. Aktualnie prowadzi się badania nad jeszcze mniej inwazyjnymi sposobami biopsji węzła wartowniczego. Jedna z metod to biopsja aspiracyjna cienkoigłowa (fine needle aspiration biopses) pod kontrolą spektroskopii rezonansu magnetycznego, opierająca się na stwierdzeniu, że węzły chłonne związane z inwazją czerniaka zawierają w spektroskopii specyficzne sygnały (magnetics resonance spektra peaks) choliny, turyny i innych charakterystycznych metabolitów. Prowadzone badania mogłyby stać się nową nieinwazyjną metodą oceny węzła wartowniczego in vivo [51, 52]. Bardzo interesująca jest przedstawiona m.in. przez Cochrana i wsp. [53] oraz Farada i wsp. [54] koncepcja selektywnej supresji w SN. Wykryte elementy odróżniające SN od niezmienionych węzłów, to zmniejszenie powierzchni korowej, redukcja złożonych dendrytów, brak markerów aktywacji, takich jak HLA-Dr, obniżona aktywność na bodźce proliferacyjne, zwiększona liczba komórek supresorowych, zmiany w rozkładzie limfocytów cytostatycznych. Próba poznania mechanizmów związanych z tym defektem immunologicznym może przyczynić się do znalezienia sposobu odwrócenia jego efektów i zmniejszenia potencjalnej inwazyjności czerniaka. Na teoretycznych założeniach tych mechanizmów opiera się wiele szczepionek, w tym np. zawierających komórki dendrytyczne [54].
Leczenie zaawansowanego przerzutowego czerniaka
Wykrywanie przerzutów czerniaka opiera się na wynikach badania przedmiotowego i podstawowych badań obrazowych, takich jak RTG i USG. Dopiero w przypadku ich podejrzenia dobiera się odpowiednie badania uzupełniające, tj. tomografię komputerową do oceny przerzutów do płuc, narządów miąższowych czy rezonans magnetyczny przydatny w wykrywaniu przerzutów czerniaka do mózgu [56]. W ostatnim czasie na świecie uważa się, że częściowo przydatne może być również badanie metodą PET [57]. W Polsce mała dostępność tego badania, brak doświadczenia zarówno radiologów wykonujących i opisujących badanie, jak i lekarzy, na których zlecenie badanie jest wykonywane wpływa na niewielkie wykorzystanie PET. Jednak w miarę wzrostu liczby wykonywanych badań i doświadczenia prawdopodobnie znajdzie również swoje miejsce w diagnostyce czerniaka. W przypadku wznowy miejscowej, stwierdzenia przerzutów w regionalnych węzłach chłonnych zasadniczą metodą leczenia jest wycięcie chirurgiczne z zastosowaniem radioterapii pooperacyjnej. Stwierdzenie przerzutów nie więcej niż do 3 narządów miąższowych jest wskazaniem do leczenia operacyjnego. Przeżycia 5-letnie w leczeniu przerzutów czerniaka do płuc stwierdza się u 20% pacjentów [58, 59], natomiast do narządów jamy brzusznej w 28–41% [60–62]. Szczególnym przypadkiem rozsiewu czerniaka są jego liczne ogniska przerzutowe w obrębie kończyny bez klinicznie uchwytnych objawów rozsiewu ogólnego. Dla takich przypadków można zastosować izolowaną perfuzję kończyny w hipertermii. Metoda ta wymaga chirurgicznej otwartej kaniulacji dużych naczyń kończyny i zastosowanie krążenia pozaustrojowego. W wersji uproszczonej możliwa jest również izolowana infuzja kończynowa. Podaje się leki cytotoksyczne, najczęściej melphalan w temp. 40–41,5°C. Całkowita liczba odpowiedzi na to leczenie przekracza 50% [63, 64]. Obydwie metody uznaje się za skuteczne i zaleca się stosowanie w przypadkach rozsiewu lokalnego w obrębie kończyny bez możliwości chirurgicznego wycięcia. Nie wykazano natomiast korzyści w przedłużeniu czasu przeżycia w profilaktycznym stosowaniu tej metody dla czerniaków o dużym ryzyku wznowy i rozsiewu [65]. Czerniak przez wiele lat uznawany był za nowotwór promieniooporny [66, 67]. Rozwój radiobiologii i dokładne określenie współczynnika wrażliwości tkanek na zmianę wysokości dawki frakcyjnej dla różnych linii komórkowych czerniaka wykazały heterogenność komórek czerniaka z koniecznością indywidualizacji dawki frakcyjnej [67–70]. Dzięki tym osiągnięciom aktualnie stosuje się radioterapię w leczeniu paliatywnym i wspomagającym radykalne leczenie chirurgiczne [67, 70]. Wskazaniem do zastosowania radioterapii w leczeniu czerniaka jest dyskwalifikacja do zabiegu chirurgicznego, brak zgody na leczenie operacyjne, uzupełnienie leczenia chirurgicznego w przypadku wątpliwej radykalności zabiegu, wznowa miejscowa, przerzuty do węzłów chłonnych, pojedyncze przerzuty do skóry, kości, tkanki podskórnej, rzadziej pojedyncze przerzuty do narządów wewnętrznych, po usunięciu przerzutu do mózgu lub paliatywnie w wybranych przypadkach niewielkich do 2 cm przerzutów do mózgu, paliatywnie przeciwbólowo w przerzutach do kości, rdzenia kręgowego, naciekaniu nerwów, w celu zahamowania krwawienia oraz w wybranych mało zaawansowanych przypadkach czerniaka gałki ocznej alternatywnie do zabiegu operacyjnego (brachyterapia) lub uzupełniająco po enukleacji gałki ocznej w przypadku naciekania nerwu wzrokowego, twardówki i spojówki [70].
Leczenie uzupełniające czerniaka
Jednym z najważniejszych problemów związanych z leczeniem czerniaka jest jego biologiczna agresywność i zdolność do tworzenia przerzutów nawet w przypadku małych guzów o głębokości naciekania <2 mm wg Breslow. Mediana czasu przeżycia dla tych chorych wynosi 7 mies. [71]. Trwają liczne badania kliniczne leczenia chorych obciążonych dużym ryzykiem nawrotu miejscowego (w II stopniu zaawansowania klinicznego), u chorych, u których wycięto regionalne węzły chłonne z powodu przerzutów (stopień III) oraz u chorych z przerzutami odległymi.
Chemioterapia
Pacjenci, u których stwierdzono wznowę miejscową i/lub przerzuty w regionalnych węzłach chłonnych narażeni są na wysokie ryzyko rozsiewu czerniaka i powstanie przerzutów odległych. Zasadniczym leczeniem w tych przypadkach jest leczenie chirurgiczne. Jednak wielu z tych chorych ma już w trakcie leczenia mikroprzerzuty i dlatego powinni być kwalifikowani do leczenia adjuwantowego lub neoadjuwantowego w ramach prospektywnych badań klinicznych [72]. Terapia systemowa w zaawansowanym czerniaku opierała się początkowo na lekach alkilujących przede wszystkim dakarbazyny (DTIC) i karmustynie (BCNU). Odsetek odpowiedzi na leczenie DTIC wynosi 19%, a mediana czasu remisji 4 mies. U pacjentów z przerzutami odległymi przeżycia 6-letnie wynoszą mniej niż 2% [73]. Kolejnym stosowanym lekiem z tej grupy jest temozolamid. Jest aktywnym metabolitem DTIC, który może być podawany doustnie. Niewiele większą skuteczność od DTIC uzyskano stosując fotemustynę, nitrozomocznik trzeciej generacji. Odsetek odpowiedzi był prawie 2-krotnie większy z wydłużeniem czasu przeżycia o 1,6 mies. w porównaniu z DTIC [74]. Próby stosowania schematów wielolekowych nie przyniosły oprócz nieco wyższego odsetka odpowiedzi na leczenie poprawy przeżyć chorych na czerniaka [19, 75]. W przypadkach wznowy miejscowej, przerzutów in transit w obrębie kończyny stosuje się izolowaną perfuzję lub infuzję dotętniczą leków chemioterapeutycznych. Metodą stosowaną obecnie jest perfuzja w temperaturze 40–41,5°C z użyciem melphalanu. Prowadzi się badania nad poprawieniem efektu terapeutycznego przez dodanie czynnika martwicy guza (TNF) i gamma interferonu do płynu perfuzyjnego [19]. Vrouenraets i wsp. udowodnili optymalną skuteczność perfuzji kończynowej w II stopniu toksyczności (uogólnione zaczerwienienie, obrzęk, całkowicie cofające się po terapii) i brak korzyści terapeutycznych po przekroczeniu tego stopnia [76].
Biochemioterapia
Prowadzone są liczne badania kliniczne nad skutecznością łączenia hormonów z dakarbazyną (tamoksyfen i dakarbazyna) [77–80] oraz leków biologicznych z dakarbazyną, tj. interferonu alfa-2, interleukiny-2 (IL-2) [81–87]. Podejmowano próby leczenia w wielolekowych kombinacjach chemioterapeutycznych i terapii biologicznej interferonem alfa w połączeniu lub nie z interleukiną-2 [80]. Obiecujące wstępne doniesienia łączenia bioterapii i chemioterapii nie zostały jednak potwierdzone w wieloośrodkowych randomizowanych badaniach klinicznych w porównaniu z monoterapią DTIC [88]. W związku z powyższym nie wprowadzono do standardowego leczenia czerniaka żadnego z tych schematów, a najlepszym schematem możliwym do zastosowania jest monoterapia DTIC. Ze względu na liczne mechanizmy immunologiczne czerniak jest nowotworem, w którym prowadzi się wiele badań nad wpływem układu odpornościowego na biologię tego nowotworu. Wśród dowodów na immunologiczne podłoże czerniaka należy wymienić: spontaniczną remisję, występowanie autoimmunologicznie uwarunkowanego bielactwa, towarzyszącą reakcję limfocytarną, zmiany aktywności komórek dendrytycznych (IDC), aktywność licznych kinin, w tym czynnika martwicy guza (TNF) czy też zmiany ekspresji głównego układu zgodności tkankowej, np. w obrębie markerów aktywacji HLA-Dr. Uważa się, że bioterapia jest obecnie najbardziej obiecującym sposobem leczenia uzupełniającego.
Podsumowanie
Dane dotyczące leczenia czerniaka nie wystarczają na razie do przyjęcia innego niż obowiązujące standardy sposobu postępowania. Podstawowe leczenie chirurgiczne na obecnym etapie nie zmieniło wyników leczenia, zmniejszając jedynie jego zakres i poprawiając selektywność. Nadal brakuje skutecznego leczenia adjuwantowego. Trwała odpowiedź na leczenie obserwowana jednak u nielicznych chorych podtrzymuje nasze nadzieje na znalezienie za pomocą najpierw wybiórczych, a następnie randomizowanych badań klinicznych skutecznego sposobu leczenia. Wobec braku wyraźnego postępu terapeutycznego aktualnie najistotniejszym elementem jest wczesna wykrywalność czerniaka i edukacja społeczna. W świetle przedstawionych aspektów diagnostyki i leczenia czerniaka oraz dominującej roli wczesnego rozpoznania jako jedynego sposobu poprawienia wyników leczenia, nadal aktualne pozostaje przesłanie Nevilla Davisa: czerniak swój przekaz wypisuje własnym atramentem na skórze, przez co staje się widoczny dla wszystkich (melanoma writes its message in the skin with its own ink and is there for all to see). Niektórzy jednak, chociaż widzą, to nie rozumieją tego przekazu [98].
Piśmiennictwo
1. Boni R, Schuster C, Nehrhoff B, Burg G. Epidemiology of Skin Cancer. Neuroendocrinol Lett 2002; 23 (supl. 2): 48-51. 2. Garbe C, Blum A. Epidemiology of cutaneous melanoma in Germany and worldwide. Skin Pharmacol Appl Skin Physiol 2001; 14: 280-90. 3. Godlewski D. Nowotwory złośliwe w Wielkopolsce. Agencja BAS – Biuro Analiz Społecznych 1998. 4. Didkowska J, Wojciechowska U, Tarnowski W, Zatoński W. Nowotwory złośliwe w Polsce w 1999 roku. Centrum Onkologii – Instytut Marii Skłodowskiej Curie 2002. 5. Wojciechowska U, Didkowska J, Tarnowski W, Zatoński W. Nowotwory złośliwe w Polsce w 2002 roku. Centrum Onkologii – Instytut Marii Skłodowskiej Curie 2004. 6. Ruka W. Standardy postępowania diagnostyczno-terapeutycznego w czerniaku skóry. W: Krzakowski M, Siedlecki P (red.). Standardy leczenia systemowego nowotworów złośliwych u dorosłych w Polsce. Grupa Multimedialna, Warszawa 1999; 89-103. 7. Cammarota T, Pinto F, Magliaro A, Sarno A. Current uses of diagnostic high frequency US in dermatology. Eur J Radiol 1998; 27: 215-223. 8. Takahashi M, Kohda H. Diagnostic utility of magnetic resonance imaging in malignant melanoma. J Am Acad Dermatol 1993; 28: 513-515. 9. Gritters LS, Francis IR, Zasadny KR, Wahl RL. Initial assessment of positron emission tomography using 2-fluorine-18-fluoro-2-deoxy-d-glucose in the imaging of malignant melanoma. J Nucl Med 1993; 34: 1420-1427. 10. Balch CM, Buzaid AC, Soong SJ, et al. Final version of the American Joint Committee on Cancer staging system for cutaneous melanoma. J Clin Oncol 2001; 19: 3635-48. 11. Balch CM, Soong SJ, Gershenwald JE, et al. rognostic factors analysis of 17,600 melanoma patients: validation of the American Joint Committee on Cancer melanoma staging system. J Clin Oncol 2001; 19: 3622-34. 12. Evans RD, Kopf AW, Lew RA, et al. Risk Factors for the development of malignant melanoma- I: review of case-control studies. J Dermatol Surg Oncol 1998; 14: 393-408. 13. Diffey BL. Sunscreen and melanoma: the future looks bright. Br J Dermatol 2005; 153: 378-81. 14. Espinosa AJ, Sanchez HJ, Bravo F, et al. Cutaneous malignant melanoma and sun exposure in Spain. Melanoma Res 1999; 9: 1999-205. 15. Moseley HS, Giuliano AE, Storm FK 3rd, et al. Multiple primary melanoma. Cancer 1979: 70: 1911-6. 16. Rigel DS, Naylor M, Robinson J. What is the evidence for a sunscreen and melanoma controversy? Arch Dermatol 2000; 136: 1447-9. 17. Rigel DS. Is the ounce of screening prevention for skin cancer worth the pound of cure? CA Cancer J Clin 1998; 48: 236-8. 18. Robinson JK, Rigel DS, Amonette RA. What promotes skin self examination? J Am Acad Dermatol 1998; 38: 752-7. 19. Friedman RJ, Rigel DS, Silverman MK, et al. Malignant melanoma in the 1990s: the continued importance of early detection and role of physician examination and self-examination of the skin. CA Cancer J Clin 1991; 41: 201-26. 20. Sahin S, Rao B, Kopf AW, et al. Predicting ten year survival of patiegnostic model. Cancer 1997; 80: 1426-31. 21. Ng AK, Jones WO, Shaw JH. Analysis of local recurrence and optimizing excision margins for cutaneous melanoma. Br J Surg 2001; 88: 137-42. 22. Towpik E (red.). Rozpoznanie kliniczne i leczenie czerniaka skóry. WHO Melanoma Programme. Wydawnictwo Polskiej Fundacji Europejskiej Szkoły Onkologii, Warszawa 1998. 23. Kycler W, Grodecka-Gazdecka S, Teresiak M, Krenz R. Wpływ wybranych cech klinicznych i morfologicznych na czas przeżycia chorych na czerniaka skóry. Współcz Onkol 2001; 5: 52-57. 24. Balch CM. The role of elective lymph node dissection in melanoma: rationale, results and controversies. J Clin Oncol 1998; 6: 163-72. 25. Milton GW, Shaw HM, McCarthy WH, et al. Prophylactic lymph node dissection in clinical stage I cutaneous malignant melanoma: results of surgical treatment in 1319 patients. Br J Surg 1982; 69: 108-11. 26. Scott RN, McKay AJ. Elective lymph node dissection in the management of malignant melanoma. Br J Surg 1993; 80: 284-8. 27. Shen P, Guenter IM, Wanek LA, Morton DL. Can elective lymph node dissection decrease the frequency and mortality rate of late melanoma reccurences? Ann Surg Oncol 2000; 7: 114-9. 28. Cascinelli N, Belli F, Santinami M, et al. Sentinel lymph node biopsy in cutaneous melanoma: the WHO Melanoma Program experience. Ann Surg Oncol 2000; 7: 469-74. 29. Garbe C, Blum A. Epidemiology of cutaneous melanoma in Germany and worldwide. Skin Pharmacol Appl Skin Physiol 2001; 14: 280-90. 30. Milton GW, Shaw HM, McCarthy WH, et al. Prophylactic lymph node dissection in clinical stage I cutaneous malignant melanoma: results of surgical treatment in 1319 patients. Br J Surg 1982; 69: 108-11. 31. Murawa P, Gracz A, Nowakowski W. Wiarygodność biopsji węzła wartowniczego w leczeniu czerniaka złośliwego skóry. Post Dermatol Alergol 2001; 18: 28-32. 32. Mussack T, Waldner H, Kharraz-Tavakol A. Risk factors for lymph node metastasis in malignant melanoma. Zentralbl Chir 1996; 121: 465-8. 33. Stokkel A, Bergman W, Pauwels EKJ. Cutaneous malignant melanoma: clinical aspects, imaging modalities and treatment. Eur J Nuclear Med 2000; 27: 447-58. 34. Wagner JD, Gordon MS, Chuang TY, et al. Predicting sentinel and residual lymph node basin disease after sentinel lymph node biopsy for melanoma. Cancer 2000; 89: 453-62. 35. Balch CM, Buzaid AC, Soong SJ, et al. Final version of the American Joint Committee on Cancer staging system for cutaneous melanoma. J Clin Oncol 2001; 19: 3635-48. 36. Cohran AJ, Balda BR, Starz H, et al. The Augsburg Consensus: Techniques of lymphatic mapping, sentinel lymphadenectomy and completion lymphadenectomy in cutaneous malignancies. Cancer 2000; 6: 225-32. 37. Cohran AJ, Wen DR, Morton DL. Occult tumor cells in the lymph nodes of patients with pathological stage I malignant melanoma: An immunohistochemical study. Am J Surg Pathol 1988; 12: 612-8. 38. Bostick PJ, Morton DL, Turner RR, et al. Prognostic significance of occult metastases detected by sentinel lymphadenectomy and reverse transcriptase-polymerase chain reaction in early-stage melanoma patients. J Clin Oncol 1999: 17: 3238-44. 39. Messina JL, Glass F. Pathologic examination of the sentinel node. J Fla Med Assoc 1997; 84: 153-6. 40. Starz H, Bachter D, Balda BR, et al. Qualitative and quantitative evaluation of sentinel lymph nodes in cutaneous malignancies. Nuklearmediziner 1999; 22: 253-60. 41. Starz H, Balda BR. Sentinel lymphadenectomy and micromorphometric S-staging, a successful new strategy in the management of cutaneous malignancies. G Ital Dermatol Venereol 2000; 135: 161-9. 42. Morton DL, Wen DR, Wong JH, et al. Technical details of intraoperative lymphatic mapping for early stage melanoma. Arch Surg 1992; 127: 392-9. 43. Cohran AJ, Wen DR, Herschmann JR. Occult melanoma in lymph nodes detected by antiserum to S-100 protein. Int J Cancer 1984; 34: 163-9. 44. Huang RR, Wen DR, Guo J, et al. Modulation of paracortical dendritic cells and T lymphocytes in breast cancer sentinel nodes. Breast 2000; 89: 237-41. 45. Cohran AJ, Wen DR, Morton DL, Stern S, et al. Sentinel lymph nodes show profound down-regulation of antigen-presenting cells of the paracortex: implications for tumor biology and treatment. Mod Pathol 2001; 14: 604-8. 46. Liszkay G, Orsz Z, Peley G, et al. Relationship between sentinel lymph node status and regression of primary malignant melanoma. Mel Res 2005; 15: 509-13. 47. Starz H, Balda BR, Kramer KU, et al. A micromorphometry based concept for routine staging classification of sentinel lymph node metastases and its clinical relevance in melanoma patients. Cancer 2001; 91: 2110-21. 48. Shivers SC, Li W, Lin J, et al. The clinical relevance of molecular staging for melanoma. Recent Results Cancer Res 2001; 158: 187-99. 49. Fincher TR, McCaety TM, Fisher TL, et al. Patterns of recurrence after sentinel lymph node biopsy for cutaneous melanoma. Am J Surg 2003; 186: 675-81. 50. Leong SP. Paradigm of metastasis for melanoma and breast cancer based on the sentinel lymph node expirence. Am J Sur Oncol 2004; 11: 192S-7S 51. Carlson GW, Murray DR, Greenlee R, et al. Management of malignant melanoma of head and neck using dynamic lymphoscintigraphy and gamma probe-guided sentinel lymph nod biopsy. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2000; 126: 433-7. 52. Essner R. Sentinel lymph node biopsy and melanoma biology. Clin Cancer Res 2006; 12: 2320-25. 53. Cohran AJ, Pihl E, Wen DR, et al. Zoned immune suppressiono of lymph nodes draining malignant melanoma. Histologic and immunohistologic studies. J Natl Cancer Inst 1997; 78: 399-405. 54. Farzad Z, Mi Bride WH, Ogbechi H, et al. Lymphocytes from lymph nodes at different distances from human melanoma vary in their capacity to inhibit/enhance tumor cell growth in vitro. Melanoma Res 1997; 7: 59-65. 55. Slingluff CL jr., Engelhard VH, Ferrone S. Peptide and dendritic cell vaccines. Clin Cancer Res 2006; 12: 2342-45. 56. Behocine TZ, Scott AM, Even-Sapir E, et al. Role of nuclear medicine in the management of cutaneous malignant melanoma. J Nucl Med 2006; 47: 957-67. 57. Francis IR, Brown RK, Avram AM. The clinical role of CT/PET in oncology – an update. Cancer Imaging 2005; 23A: S68-75. 58. Harpole DH Jr, Jahnson CM, Wolfe WG, et al. Analysis of 945 cases of pulmonary metastatic melanoma. J Thorac Cardiovasc 1992; 103: 743-48. 59. Tafra L, Dale PS, Wanek LA, et al. Resection and adjuvant immunotherapy for melanoma metastatic to lung and thorax. J Thorac Cardiovasc Surg 1994; 110: 119-28. 60. Ricaniadis N, Konstadoulakis MM, Walsh D, Karakousis CP. Gastrointestinal metastasis from malignant melanoma. Surg Oncol 1995; 4: 105-10. 61. Olila DW, Essner R, Wanek LA, Morton DL. Surgical resection for melanoma metastatic to the gastrointestinal track. Arch Surg 1996; 131: 975-80. 62. Krige JE, Nel PN, Hudson DA. Surgical treatment of metastatic melanoma of the small bowel. Am Surg 1996; 62: 658-63. 63. Thompson JF, Hunt JA, Shannon KF, Kam PC. Frequency and duration of remission after isolated limb perfusion for melanoma. Arch Surg 1997; 132: 903-7. 64. Vrouenrates BC, Nieweg OE, Kroon BBR. Thirty-five years of isolated limb perfusion for melanoma: indications and results. Br J Surg 1996; 83: 1319-28. 65. Schraffordt Koops H, Vaglini M, Suciu S, et al. Prophylactic isolated limb perfusion for localized, high-risk limb melanoma: results of a multicenter randomized phase III trial. J Clin Oncol 1998; 16: 2906-12. 66. Hellriegel W. Radiation therapy of primary and metastatic melanoma. Ann Ny Acad Sci 1963: 100-131. 67. Wideł M. Eksperymentalne i kliniczne aspekty radiobiologii czerniaka złośliwego. Nowotwory 1996; 46: 742-760. 68. Skowronek J, Matecka-Nowak M, Nowakowska E i wsp. The role of radiotherapy in the treatment of malignant melanoma. Rep Pract Oncol Radioth 1998; 1: 3-7. 69. Skowronek J, Cerkaska-Głuszak B, Matecka-Nowak M. Wyniki paliatywnej radioterapii czerniaka złośliwego. Nowiny Lekarskie 1996; 66: 25-31. 70. Skowronek J, O’Shea A, Kubaszewska M. Wyniki leczenia napromienianiem chorych na czerniaka złośliwego w materiale Wielkopolskiego Centrum Onkologii. Współcz Onkol 1999; 2: 65-68. 71. Kirkwood JM, Strawderman MH, Ernstoff MS, et al. Interferon alfa-2b adjuvant therapy of high-risk resected cutaneous melanoma: the Eastern Cooperative Oncology Group Trial EST 1684. J Clin Oncol 1996; 14: 7-17. 72. Retsas S. Adjuvant therapy of malignant melanoma: is there a choice? Crit Rev Oncol Hematol 2001; 40: 187-93. 73. Hill GJ 2nd, Moss SE, Golomb FM, et al. DTIC and combination therapy for melanoma: III. DTIC (NSC 453888) Surgical Adjuvant Study COG PROTOCOL 7040. Cancer 1981; 47: 2556-62. 74. Aamadal S, Avril MD, Grob JJ, et al. A phase III randomized trial of fotemustine (F) versus dacarbazine (DTIC) in patients with disseminated malignant melanoma with or without brain metastases. Proc Am Soc Clin Oncol 2002; 21: 136. 75. Chapman PB, Einhorn LH, Meyers ML, et al. Phase III multicenter randomized trial of the Dartmouth regimen versus dacarbazine in patients with metastatic melanoma. J Clin Oncol 1999; 17: 2745-51. 76. Vrouenraets BC, Hart GA, Eggermont AM, et al. Relation between limb toxicity and treatment outcomes after isolated limb perfusion for recurrent melanoma. J Am Coll Surg 1999; 188: 522-30. 77. Agarwala SS, Ferri W, Gooding W, Kirkwood JM. A phase III randomized trial of dacarbazine and carboplatin with and without tamoxifen in the treatment of patients with metastatic melanoma. Cancer 1999; 85: 1979-84. 78. Falkson CI, Ibrahim J, Kirkwood JM, et al. Phase III trial of dacarbazine versus dacarbazine with interferon alpha-2b versus dacarbazine with tamoxifen versus dacarbazine with interferon alpha-2b and tamoxifen in patients with metastatic malignant melanoma: an Eastern Cooperative Oncology Group study. J Clin Oncol 1998; 16 (5): 1743-51. 79. Gibbs P, Iannucci A, Becker M, et al. A phase II study of biochemotherapy for metastatic malignant melanoma. Melanoma Res 2000; 10: 171-9. 80. Philip PA, Flaherty LE. Biochemotherapy for Melanoma. Curr Oncol Rep 2000; 2: 314-21. 81. Bernengo MG, Quaglina P, Capello N, et al. Macrophage-mediate immunostimulation modulates therapeutic efficacy of interleukin-2 based chemoimmunotherapy in advanced metastatic melanoma patients. Melanoma Res 2000; 10: 55-65. 82. Daponte A, Ascierto PA, Gravina A, et al. Cisplatin, dacarbazine and fotemustine plus interferon alpha in patients with advanced malignant melanoma. A multicenter phase II study of the Italian Cooperative Oncology Group. Cancer 2000; 89: 2630-6. 83. Dillman RO, Soori G, Wiemann MC, et al. Phase II trial of subcutaneous interleukin 2, subcutaneous interferon-alpha, intravenous combination chemotherapy and oral tamoxifen in the treatment of metastatic melanoma: final result of cancer biotherapy research group 94-11. Cancer Biother Radiopharm 2000; 15: 487-94. 84. Hernberg M., Turunen JP, Muhonen T, Pyrhonen S. Tumor-infiltrating lymphocytes in patients with metastatic melanoma receiving chemoimmunotherapy. J Immunother 1997; 20: 488-95. 85. Hoffmann R, Muller I, Neuber K, et al. Risk and outcome in metastatic malignant melanoma patients receiving DTIC, cisplatin, BCNU and tamoxifen followed by immunotherapy with interleukin 2 and interferon alpha 2a. Br J Cancer 1998; 78: 1076-80. 86. Proebstle TM, Fuchs T, Scheibenbogen C, et al. Long-term outcome of treatment with dacarbazine, cisplatin, interferon-alpha and intravenous high dose interleukin-2 in poor risk melanoma patients. Melanoma Res 1998; 8: 557-63. 87. Vaughan MM, Moore J, Riches PG, et al. GM-CSF with biochemotherapy (cisplatin, DTIC, tamoxifen, IL-2 and interferon-alpha): a phase I trial in melanoma. Ann Oncol 2000; 11: 1183-9. 88. Falkson CI, Ibrahim J, Kirkwood JM, et al. phase III trial of dacarbazine versus dacarbazine with tamoxifen versus dacarbazine with interferon alpha-2b and tamoxifen in patients with metastatic malignant melanoma: Eastern Cooperative Oncology Group study. J Clin Oncol 1998; 16: 1743-61. 89. Eilber FR, Morton DL, Holmes EC, et al. Adjuvant immunotherapy with BCG in treatment of regional- lymph- node metastases from malignant melanoma. N Engl J Med 1976; 294: 237-40. 90. Cascinelli N, Belli F, MacKie RM, et al. Effect of long-term adjuvant therapy with interferon alpha-2a in patients with regional node metastases from cutaneous melanoma: A randomized trial. Lancet 2001; 358: 866-9. 91. Lens MB, Dawes M. Interferon alfa therapy for malignant melanoma: a systemic review of randomized controlled trials. J Clin Oncol 2002; 20: 1818-25. 92. Oncologic Drugs Advisory Committee. Issues in the clinical development of investigational agents being evaluated for the post-surgical adjuvant treatment of high risk (stage IIb and III) melanoma. Http://www.fda.gov/ohrms/dockets/ac/02/slides/383851.html.2002. 93. Nawrocki S, Mackiewicz A. Terapia genowa nowotworów wyzwaniem XXI wieku. Współcz Onkol 2000; 4: 190-4. 94. Sosman JA, Unger JM, Liu PY, et al. Adjuvant immunotherapy of resected, intermediate-thickness, node-negative melanoma with an allogeneic tumor vaccine: Impact of HLA class I antigen expression on outcome. I Clin Oncol 2002; 20: 2067-75. 95. Morton DL, Hsuch EC, Essner R, et al. Prolonged survival of patients receiving active immunotherapy with a Canvaxin. Ann Surg 2002; 236: 438-48. 96. Sondack VK, Liu Py, Tuthill RJ, et al. Adjuvant immunotherapy of resected, intermediate-thickness, node-negative melanoma with an allogeneic tumor vaccine: Overall results of randomized trial of the Southwest Oncology Group. J Clin Oncol 2002; 20: 2058-66. 97. Wallack MK, Sivanandham M, Balch CM, et al. Surgical adjuvant active specific immunotherapy for patients with stage III melanoma: The final analysis of data from a phase III randomized, double-blind, multicenter vaccine melanoma oncological trial. J Am Coll Surg 1998; 187: 69-79. 98. Davis N. Modern concepts of melanoma and its management. Ann Plast Surg 1978; 1: 628-9.
Adres do korespondencji
dr med. Witold Kycler
II Oddział Chirurgii Onkologicznej Wielkopolskie Centrum Onkologii ul. Garbary 15 61-866 Poznań e-mail: kycler@interia.pl
Copyright: © 2006 Termedia Sp. z o. o. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International (CC BY-NC-SA 4.0) License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/), allowing third parties to copy and redistribute the material in any medium or format and to remix, transform, and build upon the material, provided the original work is properly cited and states its license.
Quick links
© 2024 Termedia Sp. z o.o.
Developed by Bentus.