5/2008
vol. 25
Original paper INF-γ serum level in patients with morphoea and atrophoderma Pasini-Pierini considering clinical activity of disease
Post Dermatol Alergol 2008; XXV, 5: 214–219
Online publish date: 2008/11/13
Get citation
Wprowadzenie Patomechanizm procesu włóknienia w twardzinie układowej i ograniczonej nie został do końca poznany. We wczesnych stadiach choroby obserwuje się zmiany histologiczne typowe dla procesu zapalnego, tj. obfite nacieki z mononuklearów, głównie makrofagów i limfocytów T [1–3]. W dalszym etapie choroby naciek ustępuje, a zwiększa się liczba włókien kolagenowych i składników macierzy zewnątrzkomórkowej [2]. W piśmiennictwie można znaleźć wiele podziałów twardziny skórnej (LS). W całej grupie LS zmiany dotyczą wyłącznie skóry i/lub tkanek głębszych i nie obserwuje się zajęcia narządów wewnętrznych [4, 5]. Najbardziej przejrzysta i przydatna klinicznie wydaje się klasyfikacja choroby wg Petersona i wsp., która uwzględnia kształt, rozległość i głębokość stwardnień [6]. Najczęściej stwierdzaną postacią jest twardzina skórna plackowata (M). Zmiany skórne o średnicy >1 cm mają charakter stwardniałych, wyraźnie odgraniczonych ognisk, barwy woskowo-żółtawej lub porcelanowej, w okresie czynnym otoczonych sinofioletową obwódką. W okresie ustępowania ogniska przyjmują charakter przebarwień lub odbarwień, atrofii. Mogą być pojedyncze lub mnogie, w jednej lub kilku odmiennych lokalizacjach, przyjmować rozmaitą wielkość i kształt [4, 6]. Powierzchowną, poronną postacią twardziny skórnej o łagodnym przebiegu jest atrophoderma Pasini-Pierini [7]. Ogniska mają charakter przebarwień lub odbarwień z nieznacznym zanikiem skóry bądź z minimalnymi stwardnieniami w części centralnej [8]. Cechuje się ona ponadto stacjonarnym, przewlekłym przebiegiem [9]. Nie powoduje zniekształceń czy głębszych zaników i niejednokrotnie współwystępuje z ogniskami M [3, 7, 8]. Przez niektórych autorów – ze względu na odmienny obraz kliniczny – uważana jest za osobną jednostkę chorobową [10]. Patogeneza twardziny jest skomplikowana i do tej pory nie istnieje jedna, uniwersalna hipoteza tłumacząca wszystkie jej aspekty. Istotą procesu chorobowego jest immunologicznie uwarunkowane włóknienie, poprzedzone zmianami naczyniowymi oraz aktywacją wielu komórek (głównie limfocytów i monocytów) zdolnych do produkcji przekaźników białkowych – cytokin [2]. Naturalnym, silnym inhibitorem procesu włóknienia okazuje się INF-γ . Jest on wytwarzany przez pobudzone limfocyty T i komórki NK. Reguluje proliferację, chemotaksję, ekspresję receptorów powierzchniowych oraz syntezę białek macierzy zewnątrz- komórkowej. Większość badań nad patogenezą schorzenia przeprowadzonych zostało w grupie chorych z postacią układową twardziny lub na modelach zwierzęcych – m.in. tight skin mouse (TSK). U chorych na twardzinę układową wykazano zmniejszone stężenie INF-γ w surowicy, co pośrednio może wskazywać na znaczący udział tego czynnika w nasilonym, niekontrolowanym włóknieniu, jakie obserwuje się w twardzinie [9]. Interesujące jest to, jak zachowywać się będzie stężenie INF-γ w grupie chorych na twardzinę skórną. W dostępnym piśmiennictwie autorzy nie spotkali się z publikacją, w której grupą badaną byli chorzy z postacią skórną twardziny. Cel Celem pracy była ocena i porównanie stężenia INF-γ w surowicy chorych na twardzinę skórną plackowatą i atrophoderma Pasini-Pierini z uwzględnieniem klinicznej aktywności choroby oraz w porównaniu z grupą kontrolną. Podjęto ponadto próbę oceny zależności między stężeniem badanej cytokiny a parametrami klinicznymi schorzenia w grupach chorych. Materiał i metody Badaniem objęto grupę 41 pacjentów (33 kobiety, 8 mężczyzn) w wieku 9–69 lat (średnia 35,7±16,5 roku) leczonych ambulatoryjnie w Klinice Dermatologii Uniwersytetu Jagiellońskiego Collegium Medicum w Krakowie. U 18 chorych (43,9%) rozpoznano typ plackowaty (M), u 18 (43,9%) atrophoderma Pasini-Pierini (APP), a u 5 osób (12,2%) współistnienie obu typów ognisk (M + APP). Rozpoznanie twardziny skórnej ustalono na podstawie charakterystycznego dla danego typu obrazu klinicznego, obecności typowych zmian w badaniu histologicznym skóry, braku towarzyszących objawów podmiotowych, zmian narządowych i objawu Raynauda. Choroba do momentu włączenia do badania trwała dla całej grupy chorych na LS od kilku miesięcy do 21 lat (średnia 5,3±4,3 roku). U 32 chorych (78%) nie stwierdzono w surowicy przeciwciał, natomiast u pozostałych 9 – w 5 przypadkach (12,2%) obecne były przeciwciała dające na komórkach HEP-2 obraz fluorescencji homogennej, a w 4 przypadkach (9,8%) odnotowano przeciwciała niesklasyfikowane. U wszystkich chorych przeprowadzono dokładny wywiad i badanie kliniczne oraz oznaczono w surowicy stężenie INF-γ . Aktywność kliniczną choroby oceniano na podstawie pojawienia się nowych zmian skórnych w ostat- nich 3 mies., powiększenia się powierzchni zmian oraz obecności rumienia w obrębie lub zapalnej obwódki w ich otoczeniu. Opierając się na powyżej opisanych kryteriach klinicznych, chorych na twardzinę skórną podzielono na grupę w aktywnej i nieaktywnej fazie choroby. Surowica kontrolna pochodziła od 18 zdrowych ochotników (11 kobiet i 5 mężczyzn – pracowników Szpitala Uniwersyteckiego w Krakowie), średnia wieku 38,6±11,6 roku. Osoby z grupy kontrolnej nie zgłaszały dolegliwości subiektywnych, czuły się zdrowe. Stężenie INF-γ w surowicy oznaczono metodą immunoperoksydazowej ELISA zgodnie z zaleceniami producenta (INF-γ BioSource, Nivelles, Belgia). Badania wykonano w Pracowni Immunologii Uniwersyteckiego Szpitala Dziecięcego w Krakowie. Analizę statystyczną przeprowadzono przy użyciu komputerowego programu Statistica for Windows 6.0. Cechy ilościowe opisano za pomocą statystyki opisowej z wykorzystaniem średniej arytmetycznej, odchylenia standardowego, wartości najmniejszej i wartości największej. Ocenę różnic między wartościami analizowanych parametrów przeprowadzono przy użyciu jednowymiarowej analizy wariancji, testu t-Studenta, testu porównania wskaźników struktury i współczynnika korelacji liniowej Pearsona. Oceny różnic międzygrupowych dotyczących cech jakościowych dokonano za pomocą testu Fischera (najmniejszych istotnych różnic – NIR). Liczebność grupy badanej i grupy kontrolnej była wystarczająca do przeprowadzenia obliczeń statystycznych. Prawdopodobieństwo p<0,05 przyjęto za granicę znamienności. Badanie uzyskało zgodę Komisji Bioetycznej Uniwersytetu Jagiellońskiego nr KBET/443/B/2003. Wyniki Charakterystykę grupy chorych na twardzinę skórną uwzględniającą rozpoznanie (M, APP, M + APP), wiek, płeć, czas trwania choroby, obecność przeciwciał przeciwjądrowych, liczbę, lokalizację oraz powierzchnię ognisk przedstawiono w tab. 1. Średni wiek chorych w badanych podgrupach był podobny jak w całej badanej grupie chorych na twardzinę skórną. Jedynie chorzy z typem M + APP byli średnio o 8 lat starsi. Przeważały kobiety, a stosunek kobiet do mężczyzn wynosił 4:1. Średni czas trwania choroby do momentu włączenia do badania w grupie APP był ponad 2 razy dłuższy w porównaniu z grupą M i 1/3 dłuższy w porównaniu z całą grupą badanych. U 78% chorych na twardzinę skórną nie stwierdzono obecności w surowicy przeciwciał przeciwjądrowych. W grupie APP występowały tylko przeciwciała homogenne, natomiast w grupie M – niesklasyfikowane. U większości osób z twardziną skórną (LS) oraz w badanych podtypach występowały pojedyncze ogniska chorobowe (46%), zlokalizowane najczęściej na tułowiu (52%). Powierzchnia zmian w grupie M i APP nie przekraczała w ponad 50% przypadków 30 cm2. W grupie chorych, u których odnotowano współistnienie zmian o charakterze M + APP, powierzchnia zmian w 60% mieściła się między 30 a 50 cm2 i była istotnie większa w porównaniu ze wszystkimi innymi badanymi grupami. Dla pozostałych badanych zmiennych nie stwierdzono istotnych statystycznie różnic na poziomie p<0,05. W całej badanej grupie chorych na twardzinę skórną przeważały osoby w fazie nieaktywnej choroby (68%), podobnie w podgrupie z atrophoderma Pasini-Pierini (83%) oraz ze współistnieniem obu typów ognisk (80%). Jedynie w grupie M u połowy chorych zaobserwowano aktywną postać schorzenia. Wykazano znamienną statystycznie różnicę dotyczącą aktywności klinicznej między grupą chorych na APP a M (p=0,03). Stężenie INF-γ w surowicy w całej grupie chorych na twardzinę skórną, a także w podgrupach M + APP, M było mniejsze w porównaniu ze stężeniem w grupie kontrolnej. Jedynie chorzy z APP mieli średnie stężenie INF-γ w surowicy większe od średniego stężenia w grupie kontrolnej. Nie stwierdzono istotności statystycznych (tab. 2.). U chorych z aktywną postacią M odnotowano istotnie statystycznie (p=0,04) mniejsze stężenie cytokiny w porównaniu ze stężeniem w grupie M nieaktywnej. Podobnie w grupie chorych na M + APP i w całej grupie twardziny skórnej stężenie INF-γ w surowicy było mniejsze, chociaż nieznamiennie w postaciach aktywnych. Jedynie w grupie APP obserwowano większe wartości INF-γ w postaci aktywnej choroby w porównaniu z wartościami chorych na APP w postaci nieaktywnej. W całej grupie chorych na twardzinę skórną stwierdzono zależność między stężeniem INF-γ w surowicy a liczbą ognisk na skórze. Największe stężenie odnotowano u chorych z 2 ogniskami twardziny. Stężenie INF-γ w surowicy sukcesywnie zmniejszało się wraz ze wzrostem liczby ognisk chorobowych (ryc. 1.). W całej grupie chorych na LS zaobserwowano również zależność między stężeniem INF-γ w surowicy a powierzchnią zmian skórnych. Największe (p=0,003) stężenie cytokiny stwierdzono u chorych, których zmiany skórne miały wielkość 10–30 cm2, natomiast najmniejsze, gdy powierzchnia zmian była większa niż 30 cm2 (p=0,003) (ryc. 2.).
Odnotowano istotnie większe stężenie INF-γ w surowicy u chorych na M, u których powierzchnia zmian wynosiła 10–30 cm2, w porównaniu ze stężeniami w innych badanych grupach chorych. Omówienie wyników Plackowata postać twardziny skórnej (M) stanowi ponad 50% wszystkich postaci klinicznych LS i prezentuje najbardziej charakterystyczny obraz opisywany w podręcznikach [5, 12]. Atrophoderma Pasini-Pierini stwierdzana w ok. 22% przypadków LS jest powierzchowną, poronną postacią twardziny skórnej, w której stwardnienia występują rzadko, natomiast dominują procesy zanikowe [7–9]. Przez niektórych autorów APP uważana jest za odrębną jednostkę chorobową [10]. Przeczy temu podobieństwo w obrazie histologicznym i klinicznym niezwykle zbliżone lub identyczne z zejściową formą twardziny plackowatej (morphea) [8, 13]. Za potwierdzeniem przynależności tej postaci do grupy LS wskazuje ponadto fakt współistnienia nawet w 17% przypadków ognisk APP i M u jednego chorego [7]. W badaniu autorów niniejszej pracy u 5 osób stwierdzono współwystępowanie dwóch typów zmian skórnych. Z patofizjologicznego punktu widzenia – mającego swoje ścisłe odzwierciedlenie w obrazie histopatologicznym – w przebiegu twardziny można wyróżnić dwa okresy. Pierwszy – potencjalnie odwracalny, w którym aktywowane komórki bezpośrednio bądź pośrednio uszkadzają śródbłonek i stymulują fibroblasty do nadmiernej ekspresji genów kodujących składowe macierzy zewnątrzkomórkowej, i drugi – nieodwracalny – w którym dochodzi do zamknięcia naczyń krwionośnych i nadmiernego włóknienia [1, 2, 14, 15]. Pierwszy etap określa się jako aktywną fazę choroby, natomiast drugi – faza zniszczeń [15]. Wydaje się więc słuszne, aby badaną grupę chorych rozpatrywać w kontekście aktywności i stacjonarności procesu chorobowego. Aktywność kliniczną twardziny skórnej oceniano na podstawie charakterystycznych cech klinicznych ognisk [5, 12]. Większość w badanej grupie stanowili chorzy w fazie nieaktywnej. Jedynie w postaci plackowatej 50% przypadków było w aktywnej klinicznie fazie choroby. Najsilniejszym, naturalnym inhibitorem produkcji kolagenu przez fibroblasty jest INF-γ [16, 17]. Jego działanie antyfibrotyczne wyraża się przez zdolność zmniejszania poziomu mRNA dla kolagenu typu I, II i III, a także znoszenie stymulującego działania TGF-b [18]. Hamuje on ponadto proliferację fibroblastów i promuje ich apoptozę [18]. Obserwowano małe stężenie tej cytokiny w chorobach przebiegających z włóknieniem tkanek [19]. Stężenie INF-γ w surowicy wszystkich badanych przez autorów chorych na twardzinę skórną było mniejsze w porównaniu ze stężeniem w grupie kontrolnej, co może potwierdzać jego udział w patogenezie choroby. Tylko w grupie chorych na atrophoderma Pasini-Pierini (przebiegającej w większości przypadków bez stwardnień skóry) stężenie INF-γ w surowicy było większe niż w grupie kontrolnej. Autorzy nie spotkali w dostępnym piśmiennictwie badań dotyczących stężenia INF-γ w surowicy chorych na twardzinę skórną. Stężenie tej kluczowej w procesie włóknienia cytokiny oceniano u chorych na postać układową twardziny oraz w innych chorobach układowych przebiegających z nadmiernym włóknieniem [3, 16, 20, 21]. Scala i wsp. objęli badaniem grupę 54 chorych na twardzinę układową. U wszystkich osób stwierdzono zmniejszone względem grupy kontrolnej stężenie INF-γ [21]. Podobne wyniki otrzymali również Needleman i wsp., badając grupę 78 chorych na twardzinę układową [20]. Natomiast Molteni i wsp. jako jedyni w grupie 59 chorych na twardzinę układową stwierdzili większe stężenie INF-γ w surowicy. Dokładniejsza analiza wyników wykazała jednak, że duże stężenie korelowało z nieaktywną fazą choroby [3]. Autorzy pracy odnotowali również istotnie mniejsze stężenie INF-γ wśród chorych na twardzinę skórną z aktywnymi klinicznie postaciami. Od tej reguły odbiegała jedynie grupa APP, w której małe stężenie INF-γ występowało w postaciach nieaktywnych schorzenia. Odnotowano ponadto statystyczną zależność stężenia badanej cytokiny od liczby ognisk i powierzchni zajętej skóry. Małe stężenia korelowały z większą liczbą ognisk skórnych i rozległością (powierzchnią całkowitą) zmian skórnych. Wyniki badań wykazały, że stężenie INF-γ jest ważnym czynnikiem odpowiedzialnym za proces włóknienia skóry w twardzinie i może być czułym parametrem określającym nasilenie tego procesu [17, 18]. Piśmiennictwo 1. Distler O, Distler J, Kowal-Bielecka O, et al. Chemokines and chemokine receptors in the pathogenesis of systemic sclerosis. Mod Rheumatol 2002; 12: 107-12. 2. Jimenez SA, Derk CT. Following the molecular pathway toward an understanding of the pathogenesis of systemic sclerosis. Ann Intern Med 2004; 140: 37-50. 3. Molteni M, Della Bella S, Mascagni B, et al. Increased interferon-gamma (INF-γ ) levels produced in vitro by alloactivated T lymphocytes in systemic sclerosis and Raynaud’s phenomenon. Clin Exp Immunol 1999; 116: 164-8. 4. Connolly MK. Scleroderma. Dermatol Therapy 2001; 14: 81-94. 5. Sehgal VN, Srivastava G, Aggarwal AK, et al. Localized scleroderma/morphoea. Int J Dermatol 2002; 41: 467-75. 6. Peterson LS, Nelson AM, Su WP. Classification of morphea (localized scleroderma). Mayo Clin Proc 1995; 70: 1068-76. 7. Kencka D, Blaszczyk M, Jabłońska S. Atrophoderma Pasini-Pierini is a primary atrophic abortive morphea. Dermatology 1995; 190: 203-6. 8. Bisaccia EP, Scarborough DA, Lowney ED. Atrophoderma of Pasini and Pierini and systemic scleroderma. Arch Dermatol 1982; 118: 1-2. 9. Grunwald MH, Peretz E, Reuveni H, et al. Guess what! Atrophoderma of Pasini and Pierini. Eur J Dermatol 1998; 8: 135-6. 10. Pullara TJ, Lober CW, Fenske NA. Idiopathic atrophoderma of Pasini and Pierini. Int J Dermatol 1984; 23: 643-5. 11. Kämpfer H, Paulukat J, Mühl H, et al. Lack of interferon-gamma production despite the presence of interleukin-18 during cutaneous wound healing. Mol Med 2000; 6: 1016-27. 12. Vierra E, Cunningham BB. Morphea and localized scleroderma in children. Semin Cutan Med Surg 1999; 18: 210-25. 13. Szczepański A. Porównawcze badania histologiczne różnych okresów twardziny ograniczonej i atrophoderma Pasini-Pierini. Przegl Dermatol 1971; 43: 9-14. 14. Trojanowska M, LeRoy EC, Eckes B, Krieg T. Pathogenesis of fibrosis: type 1 collagen and the skin. J Mol Med 1998; 76: 266-74. 15. Valentini G, Della Rossa A, Bombardieri S, et al. European multicentre study to define disease activity criteria for systemic sclerosis. II Identification of disease activity variables and development of preliminary activity index. Ann Rheum Dis 2001; 60: 592-8. 16. Hasegawa M, Fujimoto M, Takehara K, Sato S. Pathogenesis of systemic sclerosis: Altered B cell function is the key linking systemic autoimmunity and tissue fibrosis. J Dermatol Sci 2005; 39: 1-7. 17. Ihn H, Yazawa N, Kubo M, et al. Circulating levels of soluble CD30 are increased in patients with localized scleroderma and correlated with serological and clinical features of the disease. J Rheumatol 2000; 27: 698-702. 18. Sime PJ, O’Reilly KM. Fibrosis of the lung and other tissues: new concepts in pathogenesis and treatment. Clin Immunol 2001; 99: 308-19. 19. Prior C, Haslam PL. In vivo levels and in vitro production of interferon-gamma in fibrosing interstitial lung disease. Clin Exp Immunol 1992; 88: 280-7. 20. Needleman BW, Wigley FM, Stair RW. Interleukin-1, interleukin-2, interleukin-4, tumor necrosis factor alpha and interferon gamma levels in sera from patients with scleroderma. Arthritis Rheum 1992; 35: 67-72. 21. Scala E, Pallotta S, Frezzolini A, et al. Cytokine and chemokine levels in systemic sclerosis: relationship with cutaneous and internal organ involvement. Clin Exp Immunol 2004; 138: 540-6.
Copyright: © 2008 Termedia Sp. z o. o. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International (CC BY-NC-SA 4.0) License ( http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/), allowing third parties to copy and redistribute the material in any medium or format and to remix, transform, and build upon the material, provided the original work is properly cited and states its license.
|
|