eISSN: 1897-4309
ISSN: 1428-2526
Contemporary Oncology/Współczesna Onkologia
Current issue Archive Manuscripts accepted About the journal Supplements Addendum Special Issues Editorial board Reviewers Abstracting and indexing Subscription Contact Instructions for authors Publication charge Ethical standards and procedures
Editorial System
Submit your Manuscript
SCImago Journal & Country Rank
6/2010
vol. 14
 
Share:
Share:
Original paper

Secretion of inflammatory and regulatory cytokines and the association with depth and type of tumour invasion in patients with cancer of the larynx

Katarzyna Starska
,
Iwona Lewy-Trenda
,
Jan Woś
,
Paweł Papież
,
Ewa Głowacka

Współczesna Onkologia (2010) vol. 14; 6 (355–362)
Online publish date: 2011/01/03
Article file
- Ocena wydzielania.pdf  [0.11 MB]
Get citation
 
PlumX metrics:
 

Wstęp

Jedną z najistotniejszych kwestii współczesnej onkologii nowotworów regionu głowy i szyi (head and neck squamous cell carcinomas – HNSCC), w szczególności raka płaskonabłonkowego krtani, jednego z najczęstszych guzów tego regionu, jest znalezienie obiektywnych biomarkerów agresywności nowotworu, które umożliwiłyby wskazanie fenotypu związanego z większą inwazyjnością guza. Zdefiniowanie biologicznych wskaźników, jednoznacznych w ocenie i interpretacji, pozwoliłoby w praktyce na wyodrębnienie grup chorych z nowotworami charakteryzującymi się nasiloną progresją zmian, a tym samym na wybór właściwego i optymalnego leczenia, jak też prognozowania w konkretnych przypadkach HNSCC. W dostępnym piśmiennictwie można znaleźć prace, w których autorzy wskazują na rolę wielu biomarkerów związanych m.in. z regulacją cyklu komórkowego, p27kip1, Skp2, Ki67, jako potencjalnych wskaźników inwazyjności zmian, determinujących rokowanie oraz wybór właściwego postępowania terapeutycznego [1–6]. Wśród publikacji dotyczących tego tematu można jednak wskazać prace, które nie potwierdzają roli wspomnianych wykładników jako niezależnych wskaźników agresywności wzrostu nowotworu i czynników o znaczeniu prognostycznym [7–9]. Rozbieżności w formułowanych wnioskach powodują, że nadal prowadzi się liczne badania nad znalezieniem biomarkerów będących jednoznacznymi indykatorami nasilenia zmian nowotworowych, które można by wykorzystać w praktyce onkologicznej.

W światowym piśmiennictwie liczni badacze wskazują na znaczącą rolę badań nad zaburzeniami układu odpornościowego w przebiegu choroby nowotworowej [10–22]. Dokładne poznanie i zrozumienie mechanizmów tych zaburzeń stwarza szansę na wskazanie immunologicznych wykładników związanych z klinicznym przebiegiem choroby, na podstawie których można by oceniać stopień inwazyjności zmian nowotworowych i podejmować właściwe decyzje terapeutyczne. W ostatnich latach liczne ośrodki prowadzą wielokierunkowe badania doświadczalne i kliniczne nad mechanizmami regulacyjnymi determinującymi aktywność komórek układu odpornościowego w odpowiedzi immunologicznej skierowanej przeciwko komórkom nowotworowym różnego pochodzenia. Badania nad tymi zagadnieniami stają się obecnie wiodące w immunopatologii klinicznej i wyznaczają kierunek poszukiwań dla wskazania immunologicznych markerów agresywności nowotworu [15, 18, 19, 23–32].

Cytokiny wydzielane przez komórki biorące udział w procesach immunologicznych odgrywają bardzo ważną rolę w zjawiskach odporności przeciwnowotworowej. Do tej grupy zaliczane są interleukiny (IL), w tym cytokiny o właściwościach prozapalnych (IL-6 i IL-8) oraz immunosupresyjnych (IL-10), interferony (IFN-, IFN- i IFN-), czynnik martwicy nowotworu (tumour necrosis factor – TNF) oraz czynniki wzrostu (GM-CSF). Znaczenie tych czynników w onkologii klinicznej opiera się na ich różnorodnych właściwościach modyfikowania odpowiedzi immunologicznej. Najczęściej wskazywanymi cytokinami, które mogą mieć znaczenie w przebiegu choroby nowotworowej, są interleukiny o właściwościach prozapalnych IL-6 i IL-8 oraz cytokiny IL-10 i TGF- o działaniu regulatorowym i immunosupresyjnym [19, 21, 23, 33–35]. Prozapalne cytokiny IL-6 i IL-8 wydzielane przez komórki nowotworowe, określane jako czynniki promujące kancerogenezę i wzrost guza nowotworowego, oraz cytokiny o właściwościach proonkogennych i prometastatycznych sprzyjają w szczególny sposób progresji choroby nowotworowej, w tym HNSCC [18, 23, 35–38].

Celem pracy była ocena stężeń wybranych cytokin prozapalnych i regulatorowych, tj. IL-6, IL-8, IL-10, TNF, IFN-, oznaczonych we krwi obwodowej u chorych na raka płaskonabłonkowego krtani w aspekcie ich zastosowania jako biomarkerów fenotypu większej agresywności guza nowotworowego określonej na podstawie oceny głębokości i sposobu inwazji guza nowotworowego.

Materiał i metody

Grupa badana

Analizą objęto grupę 106 osób, w tym 55 chorych ze zweryfikowanym rakiem płaskonabłonkowym krtani, leczonych chirurgicznie w Klinice Laryngologii Onkologicznej I Katedry Laryngologii Uniwersytetu Medycznego w Łodzi, w latach 2003–2007. Grupę badaną stanowiło 53 mężczyzn (96,4%) i 2 kobiety (3,6%) w wieku 47–83 lat (średnia wieku 58,3 roku). W badanej grupie chorych u 33 (60%) pacjentów przeprowadzono całkowite usunięcie krtani, a u 22 (40%) – częściowe usunięcie krtani. U 22 chorych (40%) z potwierdzonymi badaniem śródoperacyjnym powiększonymi węzłami chłonnymi wykonano ponadto operację usunięcia węzłów chłonnych regionu szyi, w tym u 20 (36,4%) selektywną operację węzłów chłonnych i u 2 (3,6%) radykalną operację węzłową w modyfikacji Crile’a-Jawdyńskiego.

Kryteriami włączenia do grupy badanej były: potwierdzony w badaniu patomorfologicznym rak płaskonabłonkowy krtani, przeprowadzenie leczenia chirurgicznego jako pierwszej metody postępowania leczniczego, bez stosowania wcześniej innej terapii (immunosupresji, radio- lub chemioterapii) oraz brak obecności przerzutów odległych. Na przeprowadzenie badań uzyskano zgodę Komisji Bioetyki UM w Łodzi (numer RNN/15/03/KN). Wszyscy uczestnicy badań osobiście wyrazili świadomą pisemną zgodę na udział w nich.

Grupa kontrolna, którą stanowili zdrowi ochotnicy dobrani pod względem wieku do grupy badanej, składała się z 51 osób: 41 mężczyzn (80,4%) i 10 kobiet (19,6%), w wieku 38–84 lat (średnia wieku 57,4 roku).

Ocena patomorfologiczna

W przeprowadzonej analizie patomorfologicznej stopień zaawansowania miejscowego zmian nowotworowych określono zgodnie z kryteriami klasyfikacji TNM dla HNSCC (UICC 2003). W ocenie głębokości i typu inwazji nowotworowej uwzględniono skalę zaawansowania zmian morfologicznych we froncie nacieku nowotworowego, tj. w jego najbardziej inwazyjnej i najmniej zróżnicowanej części, zgodnie z kryteriami klasyfikacji tumour front grading (TFG) [39]. Preparaty barwione hemoksyliną i eozyną (H&E) oceniano w mikroskopie świetlnym Olympus AX60, w 5 polach widzenia (w pow. 200×), kierując się miejscami o najgłębszym naciekaniu do otaczających tkanek. Według kryteriów klasyfikacji TFG w ocenie głębokości inwazji uwzględniono następujące stopnie zaawansowania zmian: carcinoma in situ, mikroinwazja podśluzówkowa, guzkowy naciek podśluzówkowy oraz głęboka inwazja ściany. Sposób naciekania ustalono, stosując następujący podział zmian: dobrze odgraniczone marginesy, naciek litymi sznurami i wstęgami, naciek małymi grupami (< 15 komórek) oraz naciekanie pojedynczymi komórkami. Charakterystykę kliniczno-morfologiczną grupy badanej przedstawiono w tabeli 1.

Ocena wydzielania cytokin pozapalnych i regulatorowych IL-6, IL-8, TNF, IFN- i IL-10

Krew żylną pobierano do probówki zawierającej heparynę litową (stężenie końcowe 10 j.m./ml), rozcieńczano w płynie hodowlanym RPMI-1640 (Biomed, Lublin, Poland) zawierającym 10% v/v zinaktywowanej płodowej surowicy cielęcej FCS (Biochrom AG Seromed, Berlin, Germany), 100 j.m./ml penicyliny i 100 g/ml streptomycyny (Sigma, USA), tak by uzyskać gęstość 1 × 106 komórek/ml. W celu oceny generacji cytokin: IL-6, IL-8, TNF, IFN- i IL-10, probówki wirowano (2000 obrotów/min przez 10 min) i zbierano nasącz w 21. godz. i 72. godz. hodowli komórkowej. Stężenia cytokin oceniano metodą immunoenzymatyczną ELISA, przy użyciu zestawów dla oceny ludzkiej IL-6 (czułość 2,2 pg/ml), IL-8 (czułość 2 pg/ml), TNF (czułość 2 pg/ml), IFN- (czułość 1 pg/ml), IL-10 (czułość 2 pg/ml) ELISA SET BD Opt EIA (San Diego, USA). Absorbancję badanych próbek odczytywano przy fali długości 450 nm (czytnik ELx808) (Bio-Tek Instruments, USA).

Analiza statystyczna

Ocenę statystyczną zebranych danych przeprowadzono za pomocą programu STATISTICA 5.0 (StatSoft, Inc. USA). Zastosowano jednoczynnikową analizę wariancji (test ANOVA rang Kruskala-Wallisa) wraz z testem jednorodności wariancji (test Levene’a) oraz testami porównań wielokrotnych (post-hoc test Bonferroniego-Dunneta) dla porównywania średnich wartości cech w badanych grupach. Dla wszystkich stosowanych testów przyjęto poziom istotności p  0,05.

Wyniki

Analiza wydzielania wybranych cytokin: IL-6, IL-8, TNF, IFN- i IL-10, w grupie badanej i kontrolnej

Analiza danych wykazała znamiennie zmniejszone średnie stężenie IFN- w nadsączach z krwi pełnej, ocenionych w 21. godz. doświadczenia, w grupie chorych na raka płaskonabłonkowego krtani w porównaniu z wartościami stężeń tej cytokiny w grupie kontrolnej (p = 0,02). Nie odnotowano różnic istotnych statystycznie między wartościami średnich stężeń IL-6, IL-8, TNF i IL-10 w badanych grupach. Pomimo braku znamiennych różnic dla średnich wartości stężeń IL-6, IL-8, TNF i IL-10 między grupą badaną i kontrolną, ocena stężeń cytokin wykazała występowanie zauważalnych tendencji: średnie wartości stężeń IL-6, IL-8, TNF oraz IL-10 były mniejsze w grupie badanej w porównaniu z grupą kontrolną. Zestawiając wyniki średnich wartości stężeń cytokin wygenerowanych w określonym czasie inkubacji (21. vs 72. godz.) w badanej grupie chorych, stwierdzono występowanie różnic istotnych statystycznie między wartościami stężeń dla każdej z analizowanych cytokin (p < 0,001). Średnie wartości analizowanych cytokin w grupie badanej i kontrolnej przedstawiono w tabeli 2.

Analiza wydzielania wybranych cytokin w zależności od cech klasyfikacji pTNM i cechy G

Analiza danych wykazała istotne statystycznie różnice wartości średniego stężenia IL-6 w nadsączach krwi pełnej, w układach badawczych ocenionych w 21. godz. inkubacji, w zależności od rozległości miejscowej guza nowotworowego – pT (p = 0,02). W testach post-hoc wykazano, że guzy w wysokim stadium zaawansowania miejscowego (pT4) charakteryzowały się znamiennie statystycznie mniejszymi wartościami średniego stężenia IL-6 (*p = 0,02 dla pT3 vs pT4). W analizowanych układach badawczych stwierdzono również istotne różnice wartości średniego stężenia IFN- w zależności od cechy pT (p = 0,01). W testach post-hoc wykazano, że raki krtani pT2 charakteryzowały się istotnie statystycznie większymi wartościami średniego stężenia IFN- w porównaniu z guzami pT3 i pT4 (**p = 0,05 dla pT2 vs pT4, ***p = 0,02 dla pT2 vs pT3). Ocena statystyczna danych wykazała również znamienne statystycznie różnice wartości średniego stężenia IL-6 w nadsączach krwi pełnej ocenionych w 72 godz. inkubacji dla różnego stopnia rozległości miejscowej guza nowotworowego pT (p = 0,03). We krwi obwodowej chorych z rakami krtani o większej rozległości zmian występowały mniejsze wartości stężeń IL-6. W analizowanych układach badawczych stwierdzono także istotne różnice wartości średniego stężenia TNF w zależności od cechy pT (p = 0,006). W testach post-hoc wykazano, że raki krtani pT4 charakteryzowały się istotnie statystycznie wyższymi wartościami średniego stężenia TNF w porównaniu z guzami pT2 i pT3 (*p = 0,04 dla pT2 vs pT4, **p = 0,009 dla pT2 vs pT3). Dla cechy pN oraz histologicznego zróżnicowania guza (G) nie stwierdzono istotnych statystycznie zależności (p > 0,05). Wartości średniego stężenia badanych cytokin oraz wyniki analizy statystycznej w zależności od cechy pT przedstawiono na rycinie 1.

Analiza wydzielania wybranych cytokin prozapalnych i regulatorowych w zależności od głębokości nacieku nowotworowego

Ocena statystyczna danych wykazała istotne różnice wartości średniego stężenia IL-6 w nadsączach krwi pełnej, w układach badawczych ocenionych w 21. godz. inkubacji, w zależności od głębokości inwazji nacieku nowotworowego (p = 0,03). W testach post-hoc wykazano, że raki krtani naciekające głęboko otaczające tkanki, z inwazją chrząstki, charakteryzowały się znamiennie statystycznie niższymi wartościami średniego stężenia IL-6 w porównaniu z guzami charakteryzującymi się mikroinwazją podśluzówkową (*p = 0,04). W analizowanych układach badawczych stwierdzono także istotne zależności średniego stężenia IFN- od głębokości nacieku nowotworowego (p = 0,03). W testach post-hoc wykazano, że najgłębiej naciekające raki krtani charakteryzowały się znamiennie niższymi wartościami średniego stężenia IFN- w porównaniu z guzami nowotworowymi CIS (**p = 0,03). Analiza statystyczna stężeń badanych cytokin oznaczonych w nadsączach krwi pełnej, w układach badawczych ocenionych w 72 godz. inkubacji, w zależności od głębokości inwazji nacieku nowotworowego nie wykazała istotnych statystycznie zależności (p > 0,05). Wartości średniego stężenia cytokin oraz wyniki analizy statystycznej w zależności od głębokości inwazji przedstawiono w tabeli 3.

Analiza wydzielania wybranych cytokin prozapalnych i regulatorowych w zależności od typu inwazji

Ocena statystyczna danych wykazała istotne różnice wartości średniego stężenia IL-6 w nadsączach krwi pełnej, w układach badawczych ocenionych w 21. godz. inkubacji, w zależności od typu inwazji nacieku nowotworowego (p = 0,02). W testach post-hoc wykazano, że raki krtani naciekające otaczające tkanki z zachowaniem dobrze odgraniczonych marginesów nacieku charakteryzowały się znamiennie wyższymi wartościami średniego stężenia IL-6 w porównaniu z guzami naciekającymi litymi sznurami i wstęgami (*p = 0,02). Analiza danych wykazała również istotne statystycznie różnice wartości średniego stężenia IL-10 w nadsączach krwi pełnej, w układach badawczych ocenionych w 72. godz. inkubacji, w zależności od typu inwazji (p = 0,001). W testach post-hoc wykazano, że raki krtani naciekające małymi grupami komórek (< 15 komórek) charakteryzowały się istotnie statystycznie niższymi wartościami średniego stężenia IL-10 w porównaniu z guzami z dobrze odgraniczonymi marginesami nacieku (**p = 0,04). Ocena danych wykazała ponadto istotne statystycznie różnice wartości średniego stężenia IFN- w analizowanych układach badawczych w 72. godz. inkubacji, w zależności od typu inwazji (p = 0,04). Dla TNF nie stwierdzono istotnych statystycznie zależności średnich stężeń od rozległości miejscowej guza nowotworowego (p > 0,05). Wartości średniego stężenia cytokin w zależności od typu inwazji przedstawiono na rycinie 2.

Dyskusja

Niezmiernie istotnym z punktu widzenia klinicznego elementem pracy było zestawienie uzyskanych wyników badań immunologicznych z analizą kliniczno-histopatologiczną materiału biologicznego pochodzącego od chorych na raka płaskonabłonkowego krtani w aspekcie praktycznego wykorzystania wyników przeprowadzonych badań. Szersze poznanie i zrozumienie mechanizmów regulacji odpowiedzi immunologicznej w powiązaniu ze stanem klinicznym chorych, po ostrożnej próbie łącznej interpretacji uzyskanych wyników oceny immunologiczno-kliniczno-morfologicznej, pozwoliły na podjęcie próby klinicznego przełożenia rezultatów przeprowadzonej analizy w konkretnych przypadkach raka płaskonabłonkowego krtani. W przedstawionej pracy wyniki badań wykładników procesów immunologicznych zestawiono z kryteriami klasyfikacji pTNM, stopniem zróżnicowania histopatologicznego zmian oraz szczegółowo przeanalizowano głębokość i sposób naciekania nowotworu w najbardziej inwazyjnej i najmniej zróżnicowanej części nacieku, zgodnie z kryteriami klasyfikacji TFG. Wyników przeprowadzonej wielokierunkowej analizy nie można bezpośrednio porównywać z wynikami innych autorów. W dostępnym piśmiennictwie nie znaleziono publikacji, których przedmiotem byłaby ocena badanych wykładników komórkowej odpowiedzi immunologicznej w raku płaskonabłonkowym krtani, w kontekście tak szczegółowej analizy wybranych cech nacieku nowotworowego. Prace naukowe dotyczące niejednorodnych grup raków regionu głowy i szyi, w których analizowano związki między zjawiskami immunologicznymi i cechami kliniczno-morfologicznymi guza nowotworowego, dotyczyły wyłącznie typowych wykładników histopatologicznych, tzn. kryteriów klasyfikacji TNM i stopnia klinicznego zaawansowania choroby (S), które nie pozwalają na jednoznaczną ocenę stopnia agresywności i inwazyjności nacieku, a tym bardziej nie stanowią wystarczającego i samodzielnego wskaźnika zaawansowania procesu nowotworowego [16, 33, 36, 40–45]. Do dyskusji wybrano te publikacje, w których autorzy analizowali wybrane wykładniki odpowiedzi immunologicznej typu komórkowego w odniesieniu do cech morfologicznych guzów nowotworowych u pacjentów z HNSCC, ze zbliżonym do analizowanej grupy profilem klinicznym.

W przeprowadzonych badaniach stwierdzono silną zależność wydzielania wybranych cytokin prozapalnych i regulatorowych we krwi obwodowej od klinicznego zaawansowania choroby nowotworowej. Uzyskane wyniki wskazują pośrednio na występowanie złożonych interakcji i zależności międzykomórkowych, będących wynikiem zaburzeń mechanizmów regulacyjnych komórkowej odpowiedzi immunologicznej na obecność antygenów nowotworowych. Wyniki badań wskazują na występowanie supresji autologicznych komórek współuczestniczących w reakcjach immunologicznych oraz zjawiska tolerancji w przebiegu zaawansowanego klinicznie raka krtani. Dowodzą tego znamiennie zmniejszające się wartości stężeń IL-6 i IFN-, oznaczonych we krwi obwodowej, wraz ze wzrostem inwazyjności i agresywności procesu nowotworowego, co może być pośrednim wskaźnikiem zmniejszającej się aktywności komórek układu odpornościowego, pomimo silnej stymulacji tych komórek przez antygeny guza w zaawansowanych morfologicznie zmianach nowotworowych. Wzrost inwazyjności raka płaskonabłonkowego krtani, korelujący ze zmniejszonym wydzielaniem IL-6 i IFN- przez komórki krwi obwodowej zaangażowane w procesy immunologiczne, może być spowodowany zaburzeniem funkcji tych komórek, wywołanym postępującym wraz z rozwojem choroby nowotworowej brakiem lub zmniejszonym działaniem wymienionych cytokin. Obniżenie efektywności lub hamowanie mechanizmów zależnych od IL-6 i IFN- wiąże się m.in. ze spadkiem aktywności limfocytów T rozpoznających antygen, upośledzeniem różnicowania pobudzonych przez antygen limfocytów T w kierunku limfocytów cytotoksycznych Tc, zmniejszeniem aktywacji limfocytów Tc i komórek NK mających zdolność do bezpośredniego hamowania proliferacji komórek nowotworowych oraz działania cytolitycznego [46, 47].

Osłabiona produkcja IFN- może być także spowodowana hamowaniem przez duże stężenie IL-10, wydzielanej głównie przez limfocyty Th2/Tc2, dominującą subpopulację we krwi krążącej u chorych na nowotwory [48]. Zwiększony stopień inwazji nacieku nowotworowego oraz progresja zmian nowotworowych, korelujące ze wzmożoną produkcją IL-10, wiążą się z nasileniem supresyjnych mechanizmów regulacyjnych, zależnych od tej interleukiny, m.in. hamowaniem ekspresji cząsteczek MHC klasy II na makrofagach, co prowadzi do zmniejszenia prezentacji antygenów nowotworowych, z hamowaniem powstawania limfocytów Th1 pobudzonych przez antygeny guza, blokowaniem działania limfocytów Th1 oraz makrofagów i wytwarzania przez nie cytokin, m.in. IFN-, IL-1, IL-6, IL-8, IL-12 [46, 47].

Wszystkie wymienione mechanizmy przyczyniające się do osłabienia lub braku reakcji obronnej układu odpornościowego na rozwijający się nowotwór sprzyjają zwiększeniu inwazyjności nacieku nowotworowego w raku płaskonabłonkowym krtani. Zwiększone stężenie TNF we krwi obwodowej, obserwowane u pacjentów z guzami nowotworowymi o największej rozległości miejscowej pT4, może wynikać z autokrynnej indukcji wydzielania TNF, jak również zależeć od mechanizmu braku hamowania produkcji tej cytokiny przez IL-6, której małe stężenie we krwi obwodowej zostało potwierdzone w zaawansowanych przypadkach raka krtani. Duże stężenie wydzielanego przez komórki TNF, biorącego udział w procesach odpornościowych w inwazyjnych guzach krtani, potwierdza również znaczenie tej cytokiny jako ważnego elementu odpowiedzi przeciwnowotworowej. Wzmożona produkcja TNF, pomimo narastającej wraz z nasileniem inwazji nowotworowej supresji układu odpornościowego, może wskazywać na próbę mobilizacji mechanizmów immunologicznych, które mogłyby się przyczynić do ograniczenia progresji nowotworu m.in. poprzez wzmaganie proliferacji i różnicowania limfocytów B, para- i autokrynnego oddziaływania na monocyty i makrofagi, chemotaktycznego oddziaływania na makrofagi i neutrofile oraz mediację ich cytotoksyczności, zwiększenie właściwości fagocytarnych neutrofili oraz bezpośrednie działanie cytotoksyczne i antyproliferacyjne na komórki guza lub indukcję martwicy krwotocznej nowotworu dzięki działaniu prokoagulacyjnemu. Nie należy jednak wykluczać negatywnego działania TNF w zaawansowanym raku krtani poprzez zwiększanie ekspresji cząsteczek adhezyjnych ELAM-1 (endothelial-leukocyte adhesion molecule 1) i ICAM-1 (inter-cellular adhesion molecule 1), co może się przyczyniać do zwiększonego ryzyka inwazji nowotworowej i powstawania przerzutów [46, 47]. Uzyskane w pracy wyniki oraz dane innych autorów przedstawione w dostępnym piśmiennictwie, dotyczące wzajemnych związków między stężeniem generowanych cytokin a wykładnikami klasyfikacji TNM, nie zawsze są zbieżne. Obserwacje badaczy dowodzą istnienia wielorakich zależności między analizowanymi wskaźnikami immunologiczno-klinicznymi, niedającymi się jednak zdefiniować jednoznacznie, zwłaszcza w niejednorodnej grupie HNSCC, oraz wskazują na konieczność ujednolicenia kryteriów doboru grup badawczych i wyboru materiału biologicznego, jak również indywidualnego podejścia w interpretacji wyników dotyczących danego typu guza nowotworowego do wyciągnięcia wiążących wniosków [36, 43–45, 49–51].

Przegląd piśmiennictwa pozwolił na ukazanie podobieństw i różnic w immunopatologii raka płaskonabłonkowego krtani w porównaniu z innymi HNSCC, wskazując na odmienność i w pewnym stopniu swoistość mechanizmów komórkowej odpowiedzi immunologicznej, uwarunkowanych zapewne odmienną biologią różnych typów HNSCC. Zestawienie wyników badań różnych autorów i rezultatów przeprowadzonych doświadczeń wskazuje na znaczącą rolę cytokin w patogenezie i progresji choroby nowotworowej. Heimdal i wsp. [49, 50], analizując wydzielanie cytokin in vitro w przypadkach HNSCC z różnym stopniem inwazyjności zmian, zaobserwowali zmniejszone wydzielanie IFN- i IL-2 przez jednojądrzaste komórki krwi obwodowej, korelujące ze wzrostem inwazyjności guza. Autorzy ci zanotowali także mniejszą aktywność komórek układu odpornościowego i obniżoną zdolność do proliferacji limfocytów T wraz ze wzrostem stopnia klinicznego zaawansowania choroby (S). Wyniki dotyczące IFN- zostały potwierdzone również w badaniach autorów niniejszej pracy. Sparano i wsp. [51] wykazali występowanie istotnych zależności stężeń wydzielanych cytokin IL-6 i IL-10 ze stopniem klinicznego zaawansowania guza u pacjentów z HNSCC. Nowotwory regionu głowy i szyi określone w badaniu histopatologicznym jako pT3 i pT4 charakteryzowały się zwiększonym stężeniem badanych interleukin, oznaczonych w osoczu krwi w analizowanej grupie chorych. Wyniki dotyczące roli immunosupresyjnej cytokiny IL-10 w progresji guza nowotworowego okazały się zgodne z wynikami autorów niniejszej pracy i potwierdziły występowanie związku dużego stężenia IL-10 z większą inwazyjnością procesu nowotworowego. Również Karcher i wsp. [52] wskazali na znaczenie IL-10 jako wskaźnika zwiększonej agresywności guza, określonej na podstawie oceny stopnia histologicznego zróżnicowania nowotworu. Lathers i wsp. [45], analizując występowanie związków między wydzielanymi cytokinami w grupie chorych z HNSCC, stwierdzili ujemne korelacje między stężeniem IFN- a interleukinami IL-2, IL-4, IL-6 oraz IL-10 oznaczonych w osoczu. Autorzy zanotowali jednocześnie, że w zaawansowanych guzach nowotworowych pT4 wzajemne relacje między badanymi cytokinami były znacznie mniej zaznaczone. Jebreel i wsp. [43] także potwierdzili występowanie znamiennych zależności IL-10, oznaczonej w surowicy chorych z HNSCC, od rozległości miejscowej nowotworu. Zwiększone wartości stężenia IL-10, stwierdzone w 40% analizowanych przypadków HNSCC, wiązały się z potwierdzeniem w badaniu histopatologicznym zaawansowanych guzów pT3 i pT4.

Riedel i wsp. [36], analizując stężenie IL-6 w surowicy chorych z HNSCC, wykazali istotny związek zwiększonego stężenia badanej cytokiny i cech klasyfikacji pTNM, wskazując na rolę IL-6 w różnicowaniu i regulacji wzrostu guza nowotworowego. Również Lathers i wsp. [44] potwierdzili znamienne zależności między stężeniami IL-6 i IL-4 a stopniem zaawansowania zmian nowotworowych w badanej grupie HNSCC, określonych wg kryteriów klasyfikacji pTNM. Wnioski przedstawione w cytowanych pracach, związane z analizą znaczenia IFN- i IL-10 w determinowaniu agresywności HNSCC, są zgodne z obserwacjami odnoszącymi się do badanej grupy raków płaskonabłonkowych krtani.

Rezultaty badań dotyczących oceny roli prozapalnych cytokin IL-6 i IL-8 w progresji zmian nowotworowych w HNSCC przedstawiane w dostępnym piśmiennictwie różnią się jednak od spostrzeżeń autorów niniejszej pracy. Rozbieżności w ocenie znaczenia IL-6 w rozwoju choroby nowotworowej i jej roli w determinowaniu agresywności guza mogą wynikać nie tylko z braku jednolitych kryteriów doboru grup badawczych w cytowanych pracach, różnego materiału biologicznego wykorzystanego w przeprowadzanych badaniach, ale przede wszystkim z faktu, że w większości omawianych prac analizowano stężenia IL-6 i IL-8 generowanych przez komórki nowotworowe badanych HNSCC. Wydzielanie przez komórki nacieku nowotworowego cytokin będących czynnikami promującymi wzrost guza i angiogenezę nie mogło pozostać bez wpływu na wnioski badaczy [23, 33–38]. W dostępnym piśmiennictwie można jednak wskazać prace, w których autorzy nie potwierdzają występowania związków między wydzielanymi cytokinami a cechami kliniczno-morfologicznymi badanych guzów nowotworowych regionu głowy i szyi [44, 53]. Lathers i wsp. [44] nie wykazali znamiennych zależności między stężeniem IL-6 oznaczonej w surowicy pobranej od chorych z HNSCC a parametrami morfologicznymi klasyfikacji TNM. Podobne wnioski przedstawili Chen i wsp. [53]. Badacze ci nie zaobserwowali istotnych korelacji stężeń oznaczanych w surowicy cytokin o właściwościach prozapalnych i angiogennych z cechami pT, pN, stopniem histologicznego zróżnicowania nowotworu, jak również obecnością komórek nacieku zapalnego w utkaniu guza nowotworowego.

Wnioski przedstawiane przez różnych badaczy w cytowanych pracach dowodzą występowania trudno porównywalnych odmienności w mechanizmach regulacji komórkowej odpowiedzi immunologicznej w różnych typach HNSCC oraz konieczności ostrożnej interpretacji uzyskanych wyników w celu właściwej oceny zdolności układu immunologicznego do przeciwdziałania rozwojowi procesu nowotworowego. Przedstawione wyniki dotyczące oceny stężeń badanych cytokin w raku płaskonabłonkowym krtani stanowią głos w dyskusji nad znaczeniem aktywności cytokin w zaawansowaniu i progresji zmian nowotworowych oraz wyborze właściwego postępowania terapeutycznego, a także pośrednio ich roli rokowniczej w badanej grupie chorych.

Badania zostały przeprowadzone z funduszy MNiSW (N403 04332/2326).

Piśmiennictwo

 1. Carracedo DG, Astudillo A, Rodrigo JP, Suarez C, Gonzalez MV. Skp2, p27kip1 and EGFR assessment in head and neck squamous cell carcinoma: prognostic implications. Oncol Rep 2008; 20: 589-95.  

2. Buyukbayram H, Cureoglu S, Arslan A, Iºikakdogan AR. Prognostic value of PCNA and mutant p53 expression in laryngeal squamous cell carcinoma. Cancer Invest 2004; 22: 195-202.  

3. Kumar B, Cordell KG, D’Silva N, et al. Expression of p53 and Bcl-xL as predictive markers for larynx preservation in advanced laryngeal cancer. Arch Otolaryngol Head Neck Surg 2008; 134: 363-9.  

4. Perez-Ordon~ez B, Beauchemin M, Jordan RC. Molecular biology of squamous cell carcinoma of the head and neck. J Clin Pathol 2006; 59: 445-53.  

5. Pignataro L, Sambataro G, Pagani D, Pruneri G. Clinico-prognostic value of D-type cyclins and p27 in laryngeal cancer patients: a review. Acta Otorhinolaryngol Ital 2005; 25: 75-85.  

6. Swellam M, El-Arab LR, Adly A. Prognostic value of cell-cycle regulators and cellular biomarkers in laryngeal squamous cell carcinoma. Clin Biochem 2008; 41: 1059-66.  

7. Ioachim E, Peschos D, Goussia A, et al. Expression patterns of cyclins D1, E in laryngeal epithelial lesions: correlation with other cell cycle regulators (p53, pRb, Ki-67 and PCNA) and clinicopathological features. J Exp Clin Cancer Res 2004; 23: 277-83.  

8. Micozkadiogˇlu D, Unal M, Pata YS, Baºtürk M, Cinel L. Prognostic value of expression of p53, proliferating cell nuclear antigen, and c-erbB-2 in laryngeal carcinoma. Med Sci Monit 2008; 14: 299-304.  

9. Morshed K, Skomra D, Korobowicz E, Szymański M, Polz-Dacewicz M, Gołabek W. An immunohistochemical study of cyclin D1 protein expression in laryngeal squamous cell carcinoma. Acta Otolaryngol 2007; 127: 760-9.

10. Allen C, Duffy S, Teknos T, et al. Nuclear factor-kappaB-related serum factors as longitudinal biomarkers of response and survival in advanced oropharyngeal carcinoma. Clin Cancer Res 2007; 13: 3182-90.

11. Bergmann C, Strauss L, Wang Y, et al. T regulatory type 1 cells in squamous cell carcinoma of the head and neck: mechanisms of suppression and expansion in advanced disease. Clin Cancer Res 2008; 14: 3706-15.

12. Bergmann C, Strauss L, Zeidler R, Lang S, Whiteside TL. Expansion and characteristics of human T regulatory type 1 cells in co-cultures simulating tumor microenvironment. Cancer Immunol Immunother 2007; 56: 1429-42.

13. Bose A, Chakraborty T, Chakraborty K, Pal S, Baral R. Dysregulation in immune functions is reflected in tumor cell cytotoxicity by peripheral blood mononuclear cells from head and neck squamous cell carcinoma patients. Cancer Immun 2008; 8: 10-9.

14. Bose A, Ghosh D, Pal S, Mukherjee KK, Biswas J, Baral R. Interferon alpha2b augments suppressed immune functions in tobacco-related head and neck squamous cell carcinoma patients by modulating cytokine signaling. Oral Oncol 2006; 42: 161-71.

15. Brocks CP, Pries R, Frenzel H, Ernst M, Schlenke P, Wollenberg B. Functional alteration of myeloid dendritic cells through head and neck cancer. Anticancer Res 2007; 27: 817-24.

16. Kuss I, Hathaway B, Ferris RL, Gooding W, Whiteside TL. Imbalance in absolute counts of T lymphocyte subsets in patients with head and neck cancer and its relation to disease. Adv Otorhinolaryngol 2005; 62: 161-72.

17. Kuss I, Schaefer C, Godfrey TE, et al. Recent thymic emigrants and subsets of naive and memory T cells in the circulation of patients with head and neck cancer. Clin Immunol 2005; 116: 27-36.

18. Nitsch SM, Pries R, Wollenberg B. Head and neck cancer triggers increased IL-6 production of CD34+ stem cells from human cord blood. In Vivo 2007; 21: 493-8.

19. Pries R, Wollenberg B. Cytokines in head and neck cancer. Cytokine Growth Factor Rev 2006; 17: 141-6.

20. Schaefer C, Kim GG, Albers A, Hoermann K, Myers EN, Whiteside TL. Characteristics of CD4+CD25+ regulatory T cells in the peripheral circulation of patients with head and neck cancer. Br J Cancer 2005; 92: 913-20.

21. Strauss L, Bergmann C, Szczepański M, Gooding W, Johnson JT, Whiteside TL. A unique subset of CD4+CD25high Foxp3+ T cells secreting interleukin-10 and transforming growth factor-beta1 mediates suppression in the tumor microenvironment. Clin Cancer Res 2007; 13: 4345-54.

22. Walsh JE, Lathers DM, Chi AC, Gillespie MB, Day TA, Young MR. Mechanisms of tumor growth and metastasis in head and neck squamous cell carcinoma. Curr Treat Options Oncol 2007; 8: 227-38.

23. Pries R, Thiel A, Brocks C, Woldenberg B. Secretion of tumor-promoting and immune suppresive cytokines by cell lines of head and neck squamous cell carcinoma. In Vivo 2006; 20: 45-8.

24. Barnett BG, Rüter J, Kryczek I, et al. Regulatory T cells: a new frontier in cancer immunotherapy. Adv Exp Med Biol 2008; 622: 255-60.

25. Bergmann C, Strauss L, Zeidler R, Lang S, Whiteside TL. Expansion of human T regulatory type 1 cells in the microenvironment of cyclooxygenase 2 overexpressing head and neck squamous cell carcinoma. Cancer Res 2007; 67: 8865-73.

26. Boucek J, Mrkvan T, Chovanec M, et al. Regulatory T cells and their prognostic value for patients with Squamous Cell Carcinoma of the Head and Neck. J Cell Mol Med 2010; 14: 426-33.

27. Chang AR, Wu HG, Park CI, Jun YK, Kim CW. Expression of epidermal growth factor receptor and cyclin D1 in pretreatment biopsies as a predictive factor of radiotherapy efficacy in early glottic cancer. Head Neck 2008; 30: 852-7.

28. Chikamatsu K, Sakakura K, Yamamoto T, Furuya N, Whiteside TL, Masuyama K. CD4+ T helper responses in squamous cell carcinoma of the head and neck. Oral Oncol 2008; 44: 870-7.

29. Dietz A, Boehm A, Mozet C, Wichmann G, Giannis A. Current aspects of targeted therapy in head and neck tumors. Eur Arch Otorhinolaryngol 2008; 265: 3-12.

30. Ferris RL, Whiteside TL, Ferrone S. Immune escape associated with functional defects in antigen-processing machinery in head and neck cancer. Clin Cancer Res 2006; 12: 3890-5.

31. Gomatos IP, Georgiou A, Giotakis J, et al. The role of host immune response and apoptosis in patients with laryngeal squamous cell carcinoma. ORL J Otorhinolaryngol Relat Spec 2007; 69: 159-66.

32. Loose D, Signore A, Bonanno E, et al. Prognostic value of CD25 expression on lymphocytes and tumor cells in squamous-cell carcinoma of the head and neck. Cancer Biother Radiopharm 2008; 23: 25-33.

33. Kross KW, Heimdal JH, Olsnes C, Olofsson J, Aarstad HJ. Co-culture of head and neck squamous cell carcinoma spheroids with autologous monocytes predicts prognosis. Scand J Immunol 2008; 67: 392-9.

34. Kross KW, Heimdal JH, Olsnes C, Olofsson J, Aarstad HJ. Head and neck squamous cell carcinoma spheroid- and monocyte spheroid-stimulated IL-6 and monocyte chemotactic protein-1 secretion are related to TNM stage, inflammatory state and tumor macrophage density. Acta Otolaryngol 2005; 125: 1097-04.

35. Schafer ZT, Brugge JS. IL-6 involvement in epithelial cancers. J Clin Invest 2007; 117: 3660-3.

36. Riedel F, Zaiss I, Herzog D, Götte K, Naim R, Hörmann K. Serum levels of interleukin-6 in patients with primary head and neck squamous cell carcinoma. Anticancer Res 2005; 25: 2761-5.

37. Pries R, Nitsch S, Wollenberg B. Role of cytokines in head and neck squamous cell carcinoma. Expert Rev Anticancer Ther 2006; 6: 1195-203.

38. Dong G, Chen Z, Li ZY, Yeh NT, Bancroft CC, Van Waes C. Hepatocyte growth factor/scatter factor-induced activation of MEK and PI3K signal pathways contributes to expression of proangiogenic cytokines interleukin 8 and vascular endothelial growth factor in head and neck squamous cell carcinoma. Cancer Res 2001; 61: 5911-8.

39. Welkoborsky HJ, Hinni M, Dienes HP, et al. Predicting recurrence and survival in patients with laryngeal cancer by means of DNA cytometry, tumor front grading, and proliferation markers. Ann Otol Rhinol Laryngol 1995; 104: 503-10.

40. Aarstad HJ, Heimdal JH, Klementsen B, Olofsson J, Ulvestad E. Presence of activated T lymphocytes in peripheral blood of head and neck squamous cell carcinoma patients predicts impaired prognosis. Acta Otolaryngol 2006; 126: 1326-33.

41. Badoual C, Hans S, Rodriguez J, et al. Prognostic value of tumor-infiltrating CD4+ T-cell subpopulations in head and neck cancers. Clin Cancer Res 2006; 12: 465-72.

42. Heimdal JH, Kross K, Klementsen B, Olofsson J, Aarstad HJ. Stimulated monocyte IL-6 secretion predicts survival of patients with head and neck squamous cell carcinoma. BMC Cancer 2008; 8: 34.

43. Jebreel A, Mistry D, Loke D, et al. Investigation of interleukin 10, 12 and 18 levels in patients with head and neck cancer. J Laryngol Otol 2007; 121: 246-252.

44. Lathers DM, Achille NJ, Young MR. Incomplete Th2 skewing of cytokines in plasma of patients with squamous cell carcinoma of the head and neck. Hum Immunol 2003; 64: 1160-6.

45. Lathers DM, Young MR. Increased aberrance of cytokine expression in plasma of patients with more advanced squamous cell carcinoma of head and neck. Cytokine 2004; 25: 220-8.

46. Gołąb J, Jakóbisiak M, Zagożdżon R, Obłąkowski P. Cytokiny. W: Immunologia. Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W i wsp. (red.). PWN, Warszawa 2008.

47. Jakóbisiak M, Lasek W. Immunologia nowotworów. W: Immunologia. Gołąb J, Jakóbisiak M, Lasek W i wsp. (red.). PWN, Warszawa 2008.

48. Gattoni A, Parlato A, Vangieri B, Bresciani M, Derna R. Interferon-gamma: biologic functions and HCV therapy (type I/II) (1 of 2 parts). Clin Ter 2006; 157: 377-86.

49. Heimdal JH, Aarstad HJ, Klementsen B, Olofsson J. Peripheral blood mononuclear cell (PBMC) responsiveness in patients with head and neck cancer in relation to tumour stage and prognosis. Acta Otolaryngol 1999; 119: 281-4.

50. Heimdal JH, Aarstad HJ, Olofsson J. Peripheral blood T-lymphocyte and monocyte function and survival in patients with head and neck carcinoma. Laryngoscope 2000; 110: 402-7.

51. Sparano A, Lathers DM, Achille N, Petruzzelli GJ, Young MR. Modulation of Th1 and Th2 cytokine profiles and their association with advanced head and neck squamous cell carcinoma. Otolaryngol Head Neck Surg 2004; 131: 573-6.

52. Karcher J, Reissem C, Daniel V, Herold-Mende C. Cytokine expression of transforming growth factor-beta2 and interleukin-10 in squamous cell carcinomas of the head and neck. Comparison of tissue expression and serum levels. HNO 1999; 47: 879-84.





Adres do korespondencji

dr hab. med. Katarzyna Starska

I Katedra i Klinika Otolaryngologii

Uniwersytet Medyczny

ul. Kopcińskiego 22

90-150 Łódź

e-mail: katarzyna.starska@umed.lodz.pl
Copyright: © 2011 Termedia Sp. z o. o. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International (CC BY-NC-SA 4.0) License (http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/), allowing third parties to copy and redistribute the material in any medium or format and to remix, transform, and build upon the material, provided the original work is properly cited and states its license.
Quick links
© 2024 Termedia Sp. z o.o.
Developed by Bentus.