4/2008
vol. 12
Rituximab in haematology and oncology in 10 years of experience
Współczesna Onkologia (2008) vol. 12; 4 (173-178)
Online publish date: 2008/07/22
Get citation
Wprowadzenie
Rytuksymab, chimeryczne przeciwciało monoklonalne anty-CD20, wykazuje zdolność niszczenia prawidłowych i nowotworowych limfocytów B z ekspresją antygenu CD20 na swojej powierzchni. Rytuksymab jest szeroko stosowany zarówno w monoterapii, jak i terapii skojarzonej w leczeniu chłoniaków złośliwych B-komórkowych, a ze względu na wpływ leku na układ immunologiczny, jego zastosowanie wykracza obecnie poza onkologię i hematologię, obejmując schorzenia autoimmunologiczne. W pracy przedstawiono ogólną charakterystykę rytuksymabu i omówiono wskazania rejestracyjne i inne zastosowania leku w hematologii i onkologii.
Budowa i mechanizm działania rytuksymabu
Rytuksymab (MabThera, Roche), glikozylowana immunoglobulina otrzymana metodą inżynierii genetycznej, zbudowany jest z 2 łańcuchów lekkich i 2 łańcuchów ciężkich połączonych wiązaniami dwusiarczkowymi. Regiony zmienne łańcuchów (domena Fab) pochodzą z mysich przeciwciał 2B8 wykazujących szczególnie silne powinowactwo do ludzkiego antygenu CD20. Regiony stałe rytuksymabu (domena Fc) pochodzą od ludzkich łańcuchów k i IgG1. Lek został zsyntetyzowany w 1993 r. i jest pierwszym przeciwciałem monoklonalnym stosowanym na szeroką skalę w praktyce klinicznej. W 1997 r. stosowanie rytuksymabu w monoterapii w dawce 375 mg/m2 p.c. dożylnie raz w tygodniu, przez 4 kolejne tygodnie, zostało zaaprobowane przez Amerykańską Agencję ds. Żywności i Leków (Food and Drug Administration – FDA) w leczeniu chłoniaków grudkowych (ang. follicular lymphoma – FL). Rytuksymab działa przez wiązanie się z antygenem CD20 obecnym na powierzchni prawidłowych limfocytów B i prawie wszystkich chłoniaków złośliwych B-komórkowych. Dokładny mechanizm niszczenia komórek przez lek nie jest znany, pod uwagę bierze się jednak kilka kierunków działania: • cytotoksyczność zależna od przeciwciał (ang. antibody-dependent cellular cytotoxicity – ADCC), • cytotoksyczność zależna od dopełniacza (ang. complement-dependent cellular cytotoxicity – CDCC), • bezpośrednia indukcja apoptozy, • efekt szczepionki (ang. vaccinal effect) przez limfocyty T [1].
Uważa się, że ADCC jest podstawowym i najważniejszym mechanizmem niszczenia limfocytów CD20 przez rytuksymab, a wskazują na to badania in vitro, badania na zwierzętach i analizy kliniczne [2–5]. Mechanizm ADCC polega na związaniu domeny Fc rytuksymabu z receptorami Fcg znajdującymi się na komórkach efektorowych (monocyty, granulocyty, komórki NK). Pobudzone komórki fagocytarne, na drodze fagocytozy lub w następstwie degranulacji ziarnistości cytotoksycznych, niszczą opłaszczone przez rytuksymab komórki docelowe. Domena Fc rytuksymabu wykazuje również zdolność aktywacji składowej C1q dopełniacza i niszczenia limfocytów CD20 w mechanizmie CDCC. Zjawisko to w odniesieniu do rytuksymabu potwierdzają badania in vitro, choć wyniki niektórych z nich nie są jednoznaczne [1, 6, 7]. Wykazano również, że rytuksymab bezpośrednio indukuje apoptozę nowotworowych limfocytów CD20. W badaniach in vitro wykazano wpływ rytuksymabu, w różnych mechanizmach, na ekspresję czynników antyapoptotycznych [8, 9]. Wykazano ponadto zdolność leku do przemieszczania cząsteczki CD20 w strefę bogatą w lipidy i aktywację kaspaz [10]. Wydaje się, że indukcja apoptozy przez rytuksymab odgrywa główną rolę w usuwaniu krążących nowotworowych limfocytów B, zjawisko to wymaga jednak szczegółowego wyjaśnienia [11]. Niewątpliwie jedną z najciekawszych teorii tłumaczących działanie rytu- ksymabu jest wspomniany wyżej efekt szczepionki. Teoria ta jest wynikiem spostrzeżenia, że powtórne leczenie rytuksymabem z powodu wznowy choroby, wydłuża czas trwania remisji [12]. Uważa się, że lek ten ułatwia prezentację antygenów chłoniaka przez komórki prezentujące antygen i indukuje swoiste limfocyty T [13].
Farmakokinetyka, farmakodynamika, dawkowanie i bezpieczeństwo stosowania rytuksymabu
Działanie rytuksymabu na limfocyty CD20 stwierdzono w badaniach in vitro, a następnie potwierdzono w badaniach klinicznych [14]. Wykazano także synergistyczne działanie rytuksymabu i chemioterapii wobec chłoniakowych limfocytów B i ich uwrażliwianie na działanie chemioterapii [8, 15]. Zalecenia dotyczące dawkowania opracowano na podstawie wyników badań in vitro oraz badań klinicznych I i II fazy [16–18]. Większość danych dotyczących farmakokinetyki rytuksymabu pochodzi z badań przeprowadzanych u chorych na FL. Okres półtrwania leku we krwi wynosi ok. tygodnia, ale jego aktywny poziom utrzymuje się przez 3 mies. [19]. Podanie rytuksymabu powoduje gwałtowną deplecję limfocytów B w krążeniu i układzie chłonnym. Skuteczne usunięcie krążących limfocytów B, zwykle widoczne po 3 dawkach leku, koreluje z odpowiedzią chłoniaka na leczenie przeciwciałem, z medianą czasu do wystąpienia odpowiedzi klinicznej wynoszącą ok. 50 dni [20]. Regeneracja limfocytów B rozpoczyna się 6–9 mies. po ostatnim podaniu rytuksymabu, a ich liczba wraca do normy po 12 mies. Wykazano niedojrzałość immunologiczną limfocytów B po leczeniu rytuksymabem [21]. Odnotowuje się również zmniejszenie stężenia przeciwciał IgM i IgG w surowicy utrzymujące się 5–11 mies. po podaniu leku. Działania niepożądane po leczeniu rytuksymabem obserwuje się u większości chorych, ale zazwyczaj są one krótkotrwałe (kilka godzin) i o niewielkim nasileniu, najczęściej w postaci objawów grypopodobnych. Powikłania zagrażające życiu (spazm oskrzeli, hipotonia, zaburzenia rytmu serca, niewydolność nerek, zespół rozpadu guza, niewydolność wielonarządowa, powikłana cytopenia) występują u ok. 10% chorych. Szacuje się, że śmiertelność związana z rytuksymabem nie przekracza 0,07%. Tolerancja leczenia zależy od początkowej masy guza, nasilenia limfocytozy (>25 G/l), dawki i szybkości infuzji leku.
Mechanizmy oporności na rytuksymab
Oporność pierwotna, definiowana jako brak odpowiedzi na początkową terapię rytuksymabem, występuje u ok. 50% pacjentów z nawrotową lub oporną postacią chłoniaków grudkowych, oporność nabyta dotyczy ok. 60% chorych początkowo odpowiadających na lek [22, 23]. Mechanizmy oporności na rytuksymab nie są jasne. Jedną z przyczyn jest stopień ekspresji antygenu CD20 na komórkach chłoniaka. Wykazano ponadto, że w komórkach nowotworowych może dochodzić do mutacji prowadzących do zmiany domeny wewnątrzkomórkowej antygenu CD20 i w efekcie do modyfikacji drogi przekazywania sygnałów, co skutkuje zaburzeniem procesu apoptozy [24]. Prawdopodobnie największe znaczenie w powstawaniu oporności na rytuksymab ma polimorfizm receptora FcgR, który wpływa na siłę wiązania z lekiem [4]. Rozważa się także wpływ nadmiernej ekspresji antygenów CD55 i CD59 na komórkach chłoniakowych, działających hamująco na ich niszczenie w mechanizmie CDCC [25].
Zastosowanie rytuksymabu w terapii chłoniaków złośliwych B-komórkowych
Wprowadzenie rytuksymabu do terapii w sposób znaczący wpłynęło na wyniki leczenia chłoniaków złośliwych B-komórkowych w odniesieniu do całkowitego przeżycia (ang. overall survival – OS), odsetka uzyskiwanych remisji całkowitych (ang. complete remission – CR), przeżycia wolnego od progresji (ang. progression free survival – PFS) i czasu do progresji (ang. time to progression – TTP) oraz przeżycia wolnego od zdarzeń (ang. event free survival – EFS). Zastosowanie rytuksymabu w monoterapii spowodowało znaczącą odpowiedź w części chłoniaków B-komórkowych, najlepsze wyniki obserwuje się jednak, stosując rytuksymab w terapii skojarzonej z chemioterapią wg schematu CHOP (cyklofosfamid, adriamycyna, winkrystyna, prednizon) zarówno w grupie chorych na chłoniaki mało agresywne, jak i agresywne [26]. Wskazania rejestracyjne rytuksymabu przedstawiono w tab. 1.
Chłoniaki grudkowe < W badaniu II fazy, obejmującym chorych na FL ze wznową i opornością, udokumentowano skuteczność rytuksymabu zastosowanego w monoterapii. Uzyskano 48% całkowitych odpowiedzi, z medianą TTP ok. 9 mies. i niewielkimi objawami ubocznymi terapii [23]. Monoterapia rytuksymabem w leczeniu pierwszej linii w FL z małą masą guza, umożliwia osiągnięcie odpowiedzi u 73% leczonych chorych, a w skojarzeniu z terapią CHOP u 95% pacjentów, z CR na poziomie 55% [31, 32]. Skojarzenie rytuksymabu ze standardową chemioterapią w FL – CVP (cyklofosfamid, winkrystyna, prednizon) u chorych w III–IV okresie zaawansowania, umożliwia uzyskanie odpowiedzi u 81% chorych, z TTP średnio 32 mies. w porównaniu z chorymi leczonymi tylko CVP – odpowiednio 57% i 15 mies. [29]. Wykazano ponadto, że rytuksymab jest skuteczny w terapii podtrzymującej u chorych leczonych z powodu wznowy lub oporności FL. U tak leczonych chorych udokumentowano wydłużenie OS oraz TTP [30].
Chłoniaki rozlane z dużych komórek B
Skojarzone leczenie rytuksymabem z chemioterapią CHOP-21 (co 21 dni) stosowaną łącznie do 6–8 cykli jest obecnie standardowym postępowaniem pierwszoliniowym w terapii chorych na chłoniaki rozlane z dużych komórek B (ang. diffuse large B-cell lymphoma – DLBCL) (tab. 1.). Skuteczność i bezpieczeństwo stosowania rytuksymabu w tej grupie chorych wykazano w badaniach II fazy [17, 33]. Korzystne efekty terapii R-CHOP (rytuksymab-CHOP) potwierdzono w badaniach III fazy i analizie retrospektywnej u pacjentów w szerokim przedziale wiekowym 20–80 lat, w każdym stadium zaawansowania klinicznego i niezależnie od grupy rokowniczej (International Prognostic Index – IPI) [34] (tab. 2.). W badaniu z randomizacją przeprowadzonym przez GELA (Groupe d’Etude des Lymphomes de l’Adulte), obejmującym pacjentów w wieku 60–80 lat, z dotychczas nieleczonym DLBCL, udowodniono, że zastosowanie rytuksymabu z chemioterapią CHOP powoduje statystycznie znamienny wzrost odpowiedzi na leczenie w porównaniu z chorymi otrzymującymi tylko CHOP w odniesieniu do CR (76 vs 63%), OS (53 vs 36%) i EFS (42 vs 25%) [35]. Korzystne efekty leczenia zaobserwowano zarówno w grupie chorych małego (IPI 0–1), jak i dużego (IPI ł2) ryzyka, przy podobnym profilu toksyczności. Kolejna analiza III fazy dotycząca chorych powyżej 60. roku życia przeprowadzona przez US Intergroup (ECOG/CALGB) potwierdziła powyższe obserwacje [36]. W badaniu analizowano ponadto rolę rytuksymabu w leczeniu podtrzymującym u chorych z DLBCL, którzy uzyskali CR po terapii pierwszoliniowej CHOP lub R-CHOP. Nie wykazano korzystnego wpływu takiego postępowania u pacjentów leczonych R-CHOP w odniesieniu do TTP [37]. Kolejne badanie z randomizacją MinT (MabThera International Trial) objęło chorych w wieku 20–60 lat z DLBCL z grupy dobrego i pośredniego rokowania. Wyniki leczenia były istotnie lepsze u chorych leczonych za pomocą rytuksymabu skojarzonego z chemioterapią CHOP, w porównaniu z CHOP w odniesieniu do OS (93 vs 84%) i EFS (79 vs 59%). Szczególnie korzystne wyniki uzyskano u pacjentów z IPI 0 i z małą masą guza [28]. Zachęcające wyniki leczenia obserwowane po zastosowaniu CHOP podawanego co 14 dni (CHOP-14) w porównaniu z CHOP-21 w DLBCL zapoczątkowały badania II i III fazy oceniające skuteczność i bezpieczeństwo R-CHOP-14 w terapii pierwszej linii [38]. W badaniu przeprowadzonym przez German HighGrade Lymphoma Study Group wykazano statystycznie znamienne wydłużenie OS w grupie leczonej R-CHOP-14 u chorych powyżej 60. roku życia, odnotowując jednocześnie zwiększone ryzyko powikłań infekcyjnych [39]. Obecnie planowana jest analiza porównująca skuteczność R-CHOP-21 i R-CHOP-14 w DLBCL. W ostatnim czasie rozpoczęło się badanie III fazy porównujące efektywność R-CHOP z R-EPOCH (etopozyd, prednizon, winkrystyna, cyklofosfamid, doksorubicyna, rytuksymab) w terapii pierwszej linii, uwzględniające profil molekularny DLBCL. Co ciekawe, w badaniu tym planuje się ocenę skuteczności leczenia w podgrupach z uwzględnieniem specyficznych podtypów o odmiennym profilu ekspresji genów w badaniu microarray. Chemioterapia EPOCH, w badaniach przeprowadzonych przez National Cancer Institute, wykazuje wysoką skuteczność w DLBCL niezależnie od markerów biologicznych wpływających na rokowanie [40]. Rytuksymab wpływa również na poprawę skuteczności terapii drugoliniowej u chorych ze wznową DLBCL. Wykazano to w badaniach II fazy w odniesieniu do ICE (ifosfamid, karboplatyna, etopozyd) oraz DHAP (deksametazon, cytarabina, cisplatyna) [41, 42].
Chłoniaki z komórek płaszcza
Wprowadzenie rytuksymabu do terapii chłoniaków B-komórkowych wzbudziło nadzieje na poprawę wyników leczenia chłoniaków z komórek płaszcza (ang. mantle cell lymphoma – MCL). Jednak w prospektywnym badaniu z randomizacją wykazano, że skojarzenie rytuksymabu z CHOP w de novo MCL nie wydłużyło znacząco PFS i OS w porównaniu z terapią CHOP i nie zwiększyło istotnie statystycznie odsetka pacjentów uzyskujących CR [43]. Lepsze wyniki uzyskano w badaniu II fazy, stosując rytuksymab w połączeniu z wielolekową chemioterapią Hyper-CVAD/Mtx-HA (cyklofosfamid, winkrystyna, adriamycyna, deksametazon/metotreksat, cytarabina): CR 84%, PFS 64%, ale przy jednoczesnym istotnym odsetku powikłań toksycznych i wtórnych zespołów mielodysplastycznych [44]. U chorych ze wznową lub opornością MCL skuteczne jest zastosowanie terapii skojarzonej rytuksymabu z chemioterapią FCM (fludarabina, cyklofosfamid, mitoksantron), co wykazano w wieloośrodkowym badaniu z randomizacją, wskazującym także na korzyść leczenia podtrzymującego rytuksymabem w tej grupie pacjentów [45]. W grupie chorych leczonych za pomocą wysokodawkowej terapii i transplantacji autologicznych komórek hematopoetycznych wykazano skuteczność rytuksymabu w oczyszczaniu materiału transplantacyjnego in vivo oraz w leczeniu podtrzymującym po przeszczepieniu [46].
Przewlekła białaczka limfatyczna
Próby zastosowania rytuksymabu w monoterapii w leczeniu chorych na przewlekłą białaczkę limfatyczną (ang. chronic lymphocytic leukemia – CLL) wykazały małą skuteczność standardowej dawki leku. Wynika to z mniejszej ekspresji antygenu CD20 na powierzchni komórek białaczkowych i jego większej ilości w osoczu w formie rozpuszczalnej [47]. Zwiększenie dawki rytuksymabu lub zwiększenie częstości jego podawania wiąże się ze wzrostem toksyczności, ale przynosi lepsze efekty terapeutyczne [48].W zakresie dawek 500–825 mg/m2 p.c., 1000–1500 mg/m2 p.c., 2250 mg/m2 p.c. tygodniowo powtarzanych do 4 cykli, odpowiedź na leczenie obserwowano u 21, 43 i 75% chorych, odpowiednio do wzrostu dawki [49]. Korzystniejsze wyniki leczenia osiąga się, stosując terapię skojarzoną rytuksymabu z chemioterapią. Szczególnie obiecujące wydaje się być połączenie rytuksymabu i fludarabiny, wykazujących synergizm w działaniu przeciwnowotworowym [50]. W badaniu II fazy, stosując rytuksymab z fludarabiną (FC) w leczeniu pierwszej linii chorych na CLL, uzyskano znamiennie statystycznie wyższy odsetek odpowiedzi w odniesieniu do CR, OS, PFS w porównaniu z leczeniem fludarabiną w monoterapii [51]. Skojarzone leczenie rytuksymabem, fludarabiną i cyklofosfamidem (FCR) w terapii pierwszej linii umożliwia osiągnięcie CR aż u 70% [52]. Obecnie w toku jest duże badanie III fazy porównujące skuteczność FCR i FC w leczeniu CLL. Zachęcające wyniki uzyskano, stosując także terapię skojarzoną rytuksymabem, pentostatyną i cyklofosfamidem [53]. Rytuksymab wykazuje ponadto synergizm w połączeniu z alemtuzumabem [54]. Rola leku w terapii CLL wymaga jednak dalszych badań.
Makroglobulinemia Waldenströema
Rytuksymab znalazł zastosowanie w leczeniu makroglobulinemii Waldenströema (MW) zarówno w monoterapii, jak i w terapii skojarzonej. Podobnie jak w CLL, rekomenduje się częstsze stosowanie leku w monoterapii (375 mg/m2 p.c. 2 razy w tygodniu, przez 12 tyg.), co umożliwia uzyskanie odpowiedzi u 44–48% leczonych chorych [55]. Wykazano skuteczność rytuksymabu w skojarzeniu z kladrybiną i cyklofosfa- midem, w połączeniu z fludarabiną, a także z fludarabiną i cyklofosfamidem oraz z CHOP. Leczenie skojarzone prowadzi do uzyskania odpowiedzi w ponad 90% przypadków, jednak odsetek remisji całkowitych jest niski, na poziomie 7–18% [56]. Odpowiedź na leczenie rytuksymabem w MW zależy od stężenia białka monoklonalnego w surowicy i jest gorsza, jeśli IgM >40 g/l. W trakcie leczenia rytuksymabem u ok. 50% pacjentów odnotowuje się ponadto wzrost IgM, zwykle przemijający, ale w niektórych przypadkach prowadzący do wystąpienia objawów nadlepkości. Wykazano także, że skuteczność rytuksymabu w MW zależy od polimorfizmu receptora Fcg [56].
Limfoproliferacyjna choroba poprze szczepowa
Skuteczność rytuksymabu w monoterapii lub terapii skojarzonej w leczeniu limfoproliferacyjnej choroby poprzeszczepowej (ang. post-transplantation lymphoproliferative disease – PTLD) oceniano w małych grupach chorych. Wykazano jednak wysoką skuteczność leku stosowanego w profilaktyce PTLD, zarówno w leczeniu wyprzedzającym (ang. pre-emptive therapy), jak i w terapii rozwiniętej choroby, z odsetkiem odpowiedzi na poziomie odpowiednio 61, 88 i 72%. Obecnie, ze względu na mechanizm działania, bezpieczeństwo stosowania i dostępność, rytuksymab jest leczeniem z wyboru w przypadku PTLD, choć konieczne są badania z udziałem dużych grup chorych [57, 58].
Choroby hematologiczne o podłożu autoimmunologicznym
Rytuksymab przez wpływ na limfocyty B hamuje produkcję autoprzeciwciał odpowiedzialnych za obraz kliniczny wielu schorzeń o podłożu immunologicznym. Lek jest obecnie szeroko stosowany w leczeniu chorób autoimmunologicznych w dermatologii, nefrologii i reumatologii. Znalazł też zastosowanie w leczeniu chorób o tym samym podłożu w hematologii. Większość dotychczasowych analiz ma charakter retrospektywny, obejmuje małe grupy chorych i dotyczy leczenia idiopatycznej plamicy małopłytkowej, zakrzepowej plamicy małopłytkowej, niedokrwistości autoimmunohemolitycznych i wtórnej hemofilii [59–61]. Rytuksymab stosowano najczęściej w przypadku oporności na terapię standardową. Lek zalecano w typowej dawce 375 mg/m2 p.c. dożylnie raz w tygodniu przez 4 kolejne tygodnie, obserwując odpowiedź u większości chorych, bez poważnych powikłań toksycznych. Pomimo obiecujących wstępnych wyników leczenia konieczne są jednak dalsze kontrolowane badania, które określą miejsce rytuksymabu w terapii chorób autoimmunologicznych.
Podsumowanie
Rytuksymab jest obecnie stosowany w standardowych protokołach leczenia większości chłoniaków B-komórkowych. Ponad 10 lat doświadczeń z rytuksymabem ugruntowało rolę immunoterapii w leczeniu nowotworów, otwierając drogę do dalszych badań i poszukiwania nowych leków. Coraz bogatsze są doświadczenia kliniczne z zastosowaniem rytu- ksymabu w schorzeniach o podłożu autoimmunologicznym. Ważne są dalsze badania, które określą możliwości terapeutyczne rytuksymabu i pozwolą na opracowanie nowych standardów zastosowania leku w onkologii, hematologii i chorobach nienowotworowych.
Piśmiennictwo 1. Smith MR. Rituximab (monoclonal anti-CD20 antibody): mechanisms of action and resistance. Oncogene 2003; 22: 7359-68. 2. Flieger D, Renoth S, Beier I, Sauerbruch T, Schmidt-Wolf I. Mechanism of cytotoxicity induced by chimeric mouse human monoclonal antibody IDEC-C2B8 in CD20-expressing lymphoma cell lines. Cell Immunol 2000; 204: 55-63. 3. Clynes RA, Towers TL, Presta LG, Ravetch JV. Inhibitory Fc receptors modulate in vivo cytoxicity against tumor targets. Nat Med 2000; 6: 443-6. 4. Cartron G, Dacheux L, Salles G, Solal-Celigny P, Bardos P, Colombat P, Watier H. Therapeutic activity of humanized anti-CD20 monoclonal antibody and polymorphism in IgG Fc receptor FcgammaRIIIa gene. Blood 2002; 99: 754-8. 5. Ghielmini M, Rufibach K, Salles G, et al. Single agent rituximab in patients with follicular or mantle cell lymphoma: clinical and biological factors that are predictive of response and event-free survival as well as the effect of rituximab on the immune system: a study of the Swiss Group for Clinical Cancer Research (SAKK). Ann Oncol 2005; 16: 1675-82. 6. van der Kolk LE, Grillo-Lopez AJ, Baars JW, Hack CE, van Oers MH. Complement activation plays a key role in the side-effects of rituximab treatment. Br J Haematol 2001; 115: 807-11. 7. Uchida J, Hamaguchi Y, Oliver JA, et al. The innate mononuclear phagocyte network depletes B lymphocytes through Fc receptor- dependent mechanisms during anti-CD20 antibody immunotherapy. J Exp Med 2004; 199: 1659-69. 8. Alas S, Emmanouilides C, Bonavida B. Inhibition of interleukin 10 by rituximab results in down-regulation of bcl-2 and sensitization of B-cell non-Hodgkin’s lymphoma to apoptosis. Clin Cancer Res 2001; 7: 709-23. 9. Jazirehi AR, Bonavida B. Cellular and molecular signal transduction pathways modulated by rituximab (rituxan, anti-CD20 mAb) in non-Hodgkin’s lymphoma: implications in chemosensitization and therapeutic intervention. Oncogene 2005; 24: 2121-43. 10. Janas E, Priest R, Wilde JI, White JH, Malhotra R. Rituxan (anti-CD20 antibody)-induced translocation of CD20 into lipid rafts is crucial for calcium influx and apoptosis. Clin Exp Immunol 2005; 139: 439-46. 11. Byrd JC, Kitada S, Flinn IW, et al. The mechanism of tumor cell clearance by rituximab in vivo in patients with B-cell chronic lymphocytic leukemia: evidence of caspase activation and apoptosis induction. Blood 2002; 99: 1038-43. 12. Davis TA, Grillo-Lopez AJ, White CA, et al. Rituximab anti-CD20 monoclonal antibody therapy in non-Hodgkin’s lymphoma: safety and efficacy of re-treatment. J Clin Oncol 2000; 18: 3135-43. 13. Selenko N, Maidic O, Draxier S, et al. CD20 antibody (C2B8)-induced apoptosis of lymphoma cells promotes phagocytosis by dendritic cells and cross-priming of CD8+ cytotoxic T cells. Leukemia 2001; 15: 1619-26. 14. Tedder TF, Boyd AW, Freedman AS, Nadler LM and Schlossman SF. The B cell surface molecule B1 is functionally linked with B cell activation and differentiation. J Immunol 1985; 135: 973-9. 15. Demidem A, Lam T, Alas S, Hariharan K, Hanna N and Bonavida B. Chimeric anti-CD20 (IDEC-C2B8) monoclonal antibody sensitizes a B cell lymphoma cell line to cell killing by cytotoxic drugs. Cancer Biother Radiopharm 1997; 12: 177-86. 16. Maloney DG, Grillo-Lopez AJ, Bodkin DJ, et al. IDEC-C2B8: results of a phase I multiple-dose trial in patients with relapsed non-Hodgkin’s lymphoma. J Clin Oncol 1997; 15: 3266-74. 17. Coiffier B, Haioun C, Ketterer N, et al. Rituximab (anti-CD20 monoclonal antibody) for the treatment of patients with relapsing or refractory aggressive lymphoma: a multicenter phase II study. Blood 1998; 92: 1927-32. 18. Rose AL, Smith BE and Maloney DG. Glucocorticoids and rituximab in vitro: synergistic direct antiproliferative and apoptotic effects. Blood 2002; 100: 1765-73. 19. Berinstein NL, Grillo-Lopez AJ, White CA, et al. Association of serum Rituximab (IDEC-C2B8) concentration and anti-tumor response in the treatment of recurrent low-grade or follicular non-Hodgkin’s lymphoma. Ann Oncol 1998; 9: 995-1001. 20. Maloney DG, Liles TM, Czerwinski DK, Waldichuk C, Rosenberg J, Grillo-Lopez A, Levy R. Phase I clinical trial using escalating single-dose infusion of chimeric anti-CD20 monoclonal antibody (IDEC-C2B8) in patients with recurrent B-cell lymphoma. Blood 1994; 84: 2457-66. 21. Anolik JH, Friedberg JW, Zheng B, et al. B cell reconstitution after rituximab treatment of lymphoma recapitulates B cell ontogeny. Clin Immunol 2007; 122: 139-45. 22. Bello C, Sotomayor EM. Monoclonal antibodies for B-cell lymphomas: rituximab and beyond. Hematology Am Soc Hematol Educ Program 2007; 2007: 233-42. 23. McLaughlin P, Grillo-Lopez AJ, Link BK, et al. Rituximab chimeric anti-CD20 monoclonal antibody therapy for relapsed indolent lymphoma: half of patients respond to a four-dose treatment program. J Clin Oncol 1998; 16: 2825-33. 24. Jazirehi AR, Vega MI, Bonavida B. Development of rituximab-resistant lymphoma clones with altered cell signaling and cross-resistance to chemotherapy. Cancer Res 2007; 67: 1270-81. 25. Golay J, Zaffaroni L, Vaccari T, et al. Biologic response of B lymphoma cells to anti-CD20 monoclonal antibody rituximab in vitro: CD55 and CD59 regulate complement-mediated cell lysis. Blood 2000; 95: 3900-8. 26. Coiffier B. Treatment of non-Hodgkin’s lymphoma: a look over the past decade. Clin Lymphoma Myeloma 2006; 7 Suppl 1: S7-13. 27. Feugier P, Van Hoof A, Sebban C, et al. Long-term results of the R-CHOP study in the treatment of elderly patients with diffuse large B-cell lymphoma: a study by the Groupe d’Etude des Lymphomes de l’Adulte. J Clin Oncol 2005; 23: 4117-26. 28. Pfreundschuh M, Trumper L, Osterborg A, et al. CHOP-like chemotherapy plus rituximab versus CHOP-like chemotherapy alone in young patients with good-prognosis diffuse large-B-cell lymphoma: a randomised controlled trial by the MabThera International Trial (MInT) Group. Lancet Oncol 2006; 7: 379-91. 29. Marcus R, Imrie K, Belch A, et al. CVP chemotherapy plus rituximab compared with CVP as first-line treatment for advanced follicular lymphoma. Blood 2005; 105: 1417-23. 30. van Oers MH, Klasa R, Marcus RE, et al. Rituximab maintenance improves clinical outcome of relapsed/resistant follicular non-Hodgkin lymphoma in patients both with and without rituximab during induction: results of a prospective randomized phase 3 intergroup trial. Blood 2006; 108: 3295-301. 31. Colombat P, Salles G, Brousse N, et al. Rituximab (anti-CD20 monoclonal antibody) as single first-line therapy for patients with follicular lymphoma with a low tumor burden: clinical and molecular evaluation. Blood 2001; 97: 101-6 32. Czuczman MS, Grillo-Lopez AJ, White CA, et al. Treatment of patients with low-grade B-cell lymphoma with the combination of chimeric anti-CD20 monoclonal antibody and CHOP chemotherapy. J Clin Oncol 1999; 17: 268-76. 33. Vose JM, Link BK, Grossbard ML, et al. Phase II study of rituximab in combination with chop chemotherapy in patients with previously untreated, aggressive non-Hodgkin’s lymphoma. J Clin Oncol 2001; 19: 389-97. 34. Sehn LH, Donaldson J, Chhanabhai M, et al. Introduction of combined CHOP plus rituximab therapy dramatically improved outcome of diffuse large B-cell lymphoma in British Columbia. J Clin Oncol 2005; 23: 5027-33. 35. Coiffier B, Lepage E, Briere J, et al. CHOP chemotherapy plus rituximab compared with CHOP alone in elderly patients with diffuse large-B-cell lymphoma. N Engl J Med 2002; 346: 235-42. 36. Habermann TM, Weller EA, Morrison VA, et al. Rituximab-CHOP versus CHOP alone or with maintenance rituximab in older patients with diffuse large B-cell lymphoma. J Clin Oncol 2006; 24: 3121-7. 37. Morrison VA, Weller EA, Habermann TM. Maintenance rituximab (MR) compared to observation (OBS) after R-CHOP or CHOP in older patients (pts) with diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL): an Intergroup e4404/C9793 update (abstract). Proc ASCO 2007; 25: 443s. 38. Halaas JL, Moskowitz CH, Horwitz S, et al. R-CHOP-14 in patients with diffuse large B-cell lymphoma: feasibility and preliminary efficacy. Leuk Lymphoma 2005; 46: 541-7. 39. Pfreundschuh M, Kloess M, Zeynalova S. Six vs eight cycles of biweekly CHOP-14 with or without rituximab for eldery patients with diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL): result of completed RICOVER-60 trial of German High-Grade Non-Hodgkin Lymphoma Study Group (abstract). Blood 2006; 107: 205.>br> 40. Wilson HW, Dunleavy K, Pittaluga S. DA-EPOCH-R is highly effective in both BCL-6+ and BCL-6- untreated de novo diffuse large B-cell lymphoma (DLBCL): study update and analysis of survival outcomes for multiple biomarkers. Blood 2006; 107: 65a. 41. Kewalramani T, Zelenetz AD, Bertino J. Rituximab significantly increases the complete response rate in patients with relapsed or primary refractory DLBCL receiving ICE as second-line therapy (abstract). Blood 2001; 98: 346a. 42. Witzig TE, Geyer SM, Kurtin PJ. Salvage chemotherapy with rituximab DHAP (RDHAP) for relapsed non-Hodgkin lymphoma (NHL): a phase II trial of the North Central Cancer Treatment Group (abstract). Proc ASCO 2006; 24: 440s. 43. Lenz G, Dreyling M, Hoster E, et al. Immunochemotherapy with rituximab and cyclophosphamide, doxorubicin, vincristine, and prednisone significantly improves response and time to treatment failure, but not long-term outcome in patients with previously untreated mantle cell lymphoma: results of a prospective randomized trial of the German Low Grade Lymphoma Study Group (GLSG). J Clin Oncol 2005; 23: 1984-92. 44. Romaguera JE, Fayad L, Rodriguez MA, et al. High rate of durable remissions after treatment of newly diagnosed aggressive mantle-cell lymphoma with rituximab plus hyper-CVAD alternating with rituximab plus high-dose methotrexate and cytarabine. J Clin Oncol 2005; 23: 7013-23. 45. Forstpointner R, Unterhalt M, Dreyling M, et al. Maintenance therapy with rituximab leads to a significant prolongation of response duration after salvage therapy with a combination of rituximab, fludarabine, cyclophosphamide, and mitoxantrone (R-FCM) in patients with recurring and refractory follicular and mantle cell lymphomas: Results of a prospective randomized study of the German Low Grade Lymphoma Study Group (GLSG). Blood 2006; 108: 4003-8. 46. Gianni AM, Magni M, Martelli M, et al. Long-term remission in mantle cell lymphoma following high-dose sequential chemotherapy and in vivo rituximab-purged stem cell autografting (R-HDS regimen). Blood 2003; 102: 749-55. 47. Manshouri T, Do KA, Wang X, et al. Circulating CD20 is detectable in the plasma of patients with chronic lymphocytic leukemia and is of prognostic significance. Blood 2003; 101: 2507-13. 48. Byrd JC, Murphy T, Howard RS, et al. Rituximab using a thrice weekly dosing schedule in B-cell chronic lymphocytic leukemia and small lymphocytic lymphoma demonstrates clinical activity and acceptable toxicity. J Clin Oncol 2001; 19: 2153-64. 49. O’Brien SM, Kantarjian H, Thomas DA, Giles FJ, Freireich EJ, Cortes J, Lerner S, Keating MJ. Rituximab dose-escalation trial in chronic lymphocytic leukemia. J Clin Oncol 2001; 19: 2165-70. 50. Di Gaetano N, Xiao Y, Erba E, Bassan R, Rambaldi A, Golay J, Introna M. Synergism between fludarabine and rituximab revealed in a follicular lymphoma cell line resistant to the cytotoxic activity of either drug alone. Br J Haematol 2001; 114: 800-9. 51. Byrd JC, Rai K, Peterson BL, et al. Addition of rituximab to fludarabine may prolong progression-free survival and overall survival in patients with previously untreated chronic lymphocytic leukemia: an updated retrospective comparative analysis of CALGB 9712 and CALGB 9011. Blood 2005; 105: 49-53. 52. Keating MJ, O’Brien S, Albitar M, et al. Early results of a chemoimmunotherapy regimen of fludarabine, cyclophosphamide, and rituximab as initial therapy for chronic lymphocytic leukemia. J Clin Oncol 2005; 23: 4079-88. 53. Lamanna N, Kalaycio M, Maslak P, et al. Pentostatin, cyclophosphamide, and rituximab is an active, well-tolerated regimen for patients with previously treated chronic lymphocytic leukemia. J Clin Oncol 2006; 24: 1575-81. 54. Elter T, Borchmann P, Schulz H, et al. Fludarabine in combination with alemtuzumab is effective and feasible in patients with relapsed or refractory B-cell chronic lymphocytic leukemia: results of a phase II trial. J Clin Oncol 2005; 23: 7024-31. 55. Dimopoulos MA, Zervas C, Zomas A, et al. Treatment of Waldenstrom’s macroglobulinemia with rituximab. J Clin Oncol 2002; 20: 2327-33. 56. Treon SP, Gertz MA, Dimopoulos M, et al. Update on treatment recommendations from the Third International Workshop on Waldenstrom’s macroglobulinemia. Blood 2006; 107: 3442-6. 57. Styczynski J, Einsele H, de la Camara R, Engelhard D, Reusser P, Ward KN, Ljungman P. Role of rituximab for prophylactic or preemptive therapy of EBV-DNA-emia and therapy of EBV-PTLD in HSCT recipients: a systematic review. Biol Blood Marrow Transplant 2008; 14: 118-9. 58. Milpied N, Vasseur B, Parquet N, et al. Humanized anti-CD20 monoclonal antibody (Rituximab) in post transplant B-lymphoproliferative disorder: a retrospective analysis on 32 patients. Ann Oncol 2000; 11 Suppl 1: 113-6. 59. Zaja F, Iacona I, Masolini P, et al. B-cell depletion with rituximab as treatment for immune hemolytic anemia and chronic thrombocytopenia. Haematologica 2002; 87: 189-95. 60. Koulova L, Alexandrescu D, Dutcher JP, O’Boyle KP, Eapen S, Wiernik PH. Rituximab for the treatment of refractory idiopathic thrombocytopenic purpura (ITP) and thrombotic thrombocytopenic purpura (TTP): report of three cases. Am J Hematol 2005; 78: 49-54. 61. Garvey B. Rituximab in the treatment of autoimmune haematological disorders. Br J Haematol 2008; 141: 149-69.
Adres do korespondencji lek. Anna Wache Katedra i Klinika Hematologii i Chorób Rozrostowych Układu Krwiotwórczego Uniwersytet Medyczny im. Karola Marcinkowskiego ul. Szamarzewskiego 84 60-569 Poznań tel. +48 61 854 93 50 faks +48 61 854 93 56 e-mail: aniawache@wp.pl
Copyright: © 2008 Termedia Sp. z o. o. This is an Open Access article distributed under the terms of the Creative Commons Attribution-NonCommercial-ShareAlike 4.0 International (CC BY-NC-SA 4.0) License ( http://creativecommons.org/licenses/by-nc-sa/4.0/), allowing third parties to copy and redistribute the material in any medium or format and to remix, transform, and build upon the material, provided the original work is properly cited and states its license.
|
|